Hematokrit Ikan Mas [PDF]

Citation preview

LAPORAN AKHIR PRAKTIKUM HEMATOKRIT PADA IKAN MAS (Cyprinus carpio)



Disusun Sebagai Laporan Praktikum Eko-Fisiologi Hewan Laut Tahun Akademik 2019/2020



Disusun oleh : Kelompok 2 / Kelautan Rd. Salsa Dewi Kusuma Muhammad Haiman A. Farhan Taufiq Rahman Nur Hayati



230210180008 230210180064 230210180066 230210180067



UNIVERSITAS PADJADJARAN FAKULTAS PERIKANAN DAN ILMU KELAUTAN PROGRAM STUDI ILMU KELAUTAN JATINANGOR



2018



LEMBAR PENGESAHAN



Judul Praktikum



Hematokrit Pada Ikan Mas (Cyprinus carpio)



Kelas



Kelautan



Kelompok 2



Nama



NPM



Rd. Salsa Dewi Kusuma



230210180008



Muhammad Haiman A.



230210180064



Farhan Taufiq Rahman



230210180066



Nur Hayati



230210180067



Jatinangor, November 2019 Asisten Laboratorium



Irene Retno Cahya Prihastaningtyas NPM. 230210170014



Dosen Penanggung Jawab Praktikum Mata Kuliah Eko-Fisiologi Hewan Laut



Drs. Walim Lili, M.Si NIP. 195710261988031004



KATA PENGANTAR



Bismillahirrahmanirrahim. Puji dan syukur penulis panjatkan kehadirat Allah SWT atas segala rahmat dan karunia-Nya sehingga penyusun dapat menyelesaikan laporan praktikum dengan judul Pengaruh Nikotin dan Alkohol Terhadap Laju Alir Darah Benih Ikan Mas (Cyprinus Caprio) ini dengan baik. Penyusunan laporan ini ditujukan untuk memenuhi syarat nilai praktikum mata kuliah Eko-Fisiologi Hewan Laut di Program Studi Ilmu Kelautan Universitas Padjadjaran. Laporan ini dapat terselesaikan dengan baik oleh penyusun karena bantuan banyak pihak. Oleh sebab itu, pada kesempatan kali ini penyusun ingin mengucapkan terimakasih kepada : •



Ibu Sri Astuty dan Bapak Walim Lili selaku dosen mata kuliah Eko-Fisiologi Hewan



Laut. •



Kang Adrian Cahyo dan dan Teh Irene Retno Cahya Prihastaningtyas selaku asisten



laboratorium mata kuliah Eko-Fisiologi Hewan Laut. •



Semua pihak yang ikut membantu penysun dalam pembuatan laporan ini. Meskipun sudah terselesaikan, kami menyadari bahwa dalam laporan ini masih



banyak terdapat kekurangan. Sehingga sangat besar harapan kami bahwa semua pihak khususnya pembaca bisa memberikan saran dan kritik membangun untuk meningkatkan kualitas laporan ini kedepannya dan semoga bisa bermanfaat untuk semua pihak.



Jatinangor, 8 November 2019



Kelompok 2



i



DAFTAR ISI



No



Halaman KATA PENGANTAR ............................................................................................. i DAFTAR ISI ........................................................................................................... ii DAFTAR TABEL.................................................................................................. iii DAFTAR GAMBAR ............................................................................................. iv DAFTAR LAMPIRAN .......................................................................................... v



I. PENDAHULUAN ................................................................................................... 1 1.1 Latar Belakang ............................................................................................... 1 1.2 Tujuan............................................................................................................. 1 1.3 Manfaat ........................................................................................................... 1 II. TINJAUAN PUSTAKA ......................................................................................... 2 2.1 Ikan Mas ......................................................................................................... 2 2.1.1 Klasifikasi Ikan Mas ....................................................................................... 3 2.1.2 Fisiologi Ikan Mas .......................................................................................... 3 2.2 Sistem Peredaran Darah Ikan ......................................................................... 4 2.2.1 Komponen Penyusun Darah Ikan ................................................................... 4 2.2.2 Jantung Ikan ................................................................................................... 5 2.2.3 Saluran Darah Ikan ......................................................................................... 6 2.3 Hematokrit ...................................................................................................... 7 2.3.1 Metode Pengukuran Hematokrit..................................................................... 8 2.3.2 Faktor-Faktor Yang Mempengaruhi Nilai Hematokrit ................................... 8 III. BAHAN DAN METODE ..................................................................................... 10 3.1 Tempat dan Waktu ....................................................................................... 10 3.2 Alat dan Bahan ............................................................................................. 10 3.1.1 Alat ............................................................................................................... 10 3.1.2 Bahan............................................................................................................ 10 3.3 Prosedur Praktikum ...................................................................................... 10 IV. HASIL DAN PEMBAHASAN .......................................................................... 122 4.1 Data Kelompok ............................................................................................ 12 4.2 Data Angkatan ............................................... Error! Bookmark not defined.3 V. SIMPULAN DAN SARAN ................................................................................ 166 5.1 Simpulan..................................................................................................... 166 5.2 Saran ........................................................................................................... 166 DAFTAR PUSTAKA ......................................................................................... 107 LAMPIRAN .......................................................................................................... 19



ii



DAFTAR TABEL



Nomor



Judul



Halaman



1. Alat Praktikum ........................................................................................... 10 2. Bahan Praktikum ........................................................................................ 10 3. Bobot dan Nilai Hematokrit Ikan Mas Kelompok 2 .................................. 12



iii



DAFTAR GAMBAR



Nomor 1. 2. 3. 4. 5. 6. 7. 8.



Judul



Halaman



Ikan Mas (Cyprinus carpio) ..................................................................... 2 Sistem Peredaran Darah Ikan ................................................................... 4 Sel Darah Merah Ikan ............................................................................. 4 Sel Darah Putih Ikan ................................................................................ 5 Jantung Ikan ............................................................................................. 6 Saluran Darah Ikan .................................................................................. 7 Grafik Distribusi Nilai Hematokrit Ikan Mas ........................................ 13 Grafik Hubungan Bobot Dengan Nilai Hematokrit Ikan Mas ............... 15



iv



DAFTAR LAMPIRAN



Nomor 1. 2. 3. 4. 5.



Judul



Halaman



Alat yang digunakan ............................................................................... 20 Bahan yang di gunakan ........................................................................... 21 Prosedur Praktikum................................................................................. 22 Kegiatan Praktikum ................................................................................ 23 Data Angkatan ........................................................................................ 25



v



BAB I PENDAHULUAN



1.1



Latar Belakang Ikan mas (Cyprinus carpio) merupakan salah satu ikan air tawar yang memilki nilai



ekonomis cukup tinggi di pasaran Indonesia dan sering di budidayakan. Sejak tahun 1920-an ikan mas dipelihara dalam tambak oleh petani ikan di beberapa wilayah Indonesia. Ikan mas sering dipelihara di sawah bersama-sama dengan tanaman padi. Ikan mas termasuk ika yang mudah di budidayakan ,mempunyai daging berasa lezat, dan mengandung nilai gizi tinggi (Rudiyanti, 2009). Menurut Nurjanah (2009), usaha budidaya ikan pada media tambak sampai saat ini masih mengalami beberapa permasalahan, yaitu ancaman penyakit, sedimentasi yang tinggi yang dapat menyebabkan pendangkalan saluran tambak, sulitnya mencari benih unggul, serta rusaknya ekosistem lingkungan pesisir. Pada budidaya media tambak, rentan sekali penyakit timbul seperti white spot yang menyebabkan produksi tambak menjadi menurun. Hal tersebut disebabkan oleh semakin menurunnya mutu lingkungan oleh pencemaran. Komponen darah pada ikan ialah sel darah dan plasma darah. Sel darah terdiri atas eritrosit (sel darah merah), leukosit (sel darah putih), dan trombosit (keping darah). Sementara plasma darah merupakan cairan yang banyak mengandung air dan protein dan berfungsi sebagai penyalur sel darah. Hematokrit atau volume darah yang dimampatkan dapat dijadikan sebagai indikator kondisi kesehatan ikan. Dalam penelitian Chen (2004) dalam Hastuti (2015) pada ikan mas menunjukkan bahwa hematokrit dan glukosa dapat menjadi indikator untuk menunjukkan kondisi kesehatan ikan.



1.2



Tujuan Tujuan dari praktikum hematokrit pada ikan mas adalah untuk menganalisa nilai



hematokrit pada ikan mas, dan mengetahui perhitungan nilai hematokrit pada ikan mas.



1.3



Manfaat Manfaat praktikum ini yaitu praktikan dapat mengetahui kondisi sehat atau tidaknya



dari ikan.



1



BAB II TINJAUAN PUSTAKA



2.1



Ikan Mas Ikan mas atau ikan karper (Cyprinus carpio) adalah ikan air tawar yang bernilai



ekonomis dan tersebar luas di Indonesia. Ikan mas sudah dipelihara sejak tahun 475 sebelum masehi di Cina (Menegristek, 2000). Ikan mas mulai dikenal pertama kali di Indonesia yaitu di daerah Galuh, Ciamis, Jawa Barat sekitar tahun 1810. Kemudian mulai berkembang ke daerah-daerah lain di Jawa Barat. Ikan mas mulai berkembang ke wilayah Sumatera seperti Bukit Tinggi, Sumatera Barat, dan Medan pada tahun 1903. Ikan mas dikenal di Sulawesi pada tahun 1895 yang diawali dari daerah Tondano, Sulawesi Utara. Ikan mas mulai dibudidayakan di Pulau Bali dan Pulau Flores pada tahun 1931. Penyebaran ikan mas ke berbagai daerah di Indonesia relatif begitu cepat. Hal ini terjadi karena cara pemeliharaan dan pembudidayaan ikan mas tergolong mudah serta sifatnya yang tahan terhadap berbagai kondisi lingkungan (Khairuman et al. 2008). 2.1.1 Klasifikasi Ikan Mas



Gambar 1. Ikan Mas (Cyprinus carpio) (Sumber: Saanin, 1984)



Klasifikasi Ikan mas dikenal dengan berbagai sebutan yaitu dalam bahasa Inggris disebut common carp. Masyarakat di Pulau Jawa menyebut ikan mas dengan sebutan ikan



2



mas-masan atau lauk mas sedangkan di daerah Sumatera, ikan mas dikenal dengan sebutan ikan rayo atau ikan ameh (Khairuman et al., 2008). Berdasarkan ilmu taksonomi hewan, klasifikasi ikan mas menurut Saanin (1984), adalah sebagai berikut : Filum Sub filum Kelas Sub kelas Ordo Sub oedo Famili Genus Spesies



: Chordata : Vertebrata : Pisces : Teleostei : Ostariophysi : Cyrinoidea : Cyprinidea : Cyprinus : Cyprinus carpio



2.1.2 Fisiologi Ikan Mas Ikan mas memiliki sistem peredaran darah yang sama dengan sistem peredaran darah yang dimiliki oleh ikan – ikan pada umumnya. Sistem peredaran darah pada ikan mas diatur oleh organ jantung. Jantung pada ikan mas terdiri atas atrium dan ventrikel, serta sinus venosus. Kadar hemoglobin yang ada pada ikan mas dengan kondisi sehat adalah pada ikan mas jantan 6,22 g/dl dan pada ikan mas betina 7,20 g/dl (Yanto et al. 2015).



2.2



Sistem Peredaran Darah Ikan Sistem perderan darah adalah sistem yang berfungsi untuk mengangkut O2 dari



perairan ke sel-sel tubuh yang membutuhkan, juga mengangkut enzim, zat-zat nutrisi, garam-garam, hormon, dan anti bodi serta mengangkut CO2 keluar tubuh. Ikan mempunyai sistem peredaran darah tertutup yang artinya darah tidak akan pernah keluar dari pembuluh darah, sehingga tidak ada hubungan langsung dengan sel sekitarnya. Darah memberi bahan materi dengan perantaraan difusi melalui dinding yang tipis dari kapiler darah, dan kembali ke jantung melalui pembuluh yang kedua. Atau secara garis besarnya peredaran darah tunggal adalah peredaran darah yang darah nya dari insang langsung beredar ke seluruh tubuh kemudian masuk ke jantung. Jadi darah hanya berbedar sekali melalui jantung yang berawal dari jantung ke insang lalu ke seluruh tubuh kemudian kembali ke jantung. Organ utamanya adalah jantung



yang



berperan



sebagai



pompa



tekan



merangkap



pompa



hisap.



Darah



ditekan mengalir keluar dari jajntung melalui pembuluh arteri ke seluruh tubuh sampai kapiler darah, kemudian dihisap melalui pembuluh vena dan kembali ke jantung (Fujaya, 2004). 3



Gambar 2. Sistem Peredaran Darah Ikan (Sumber: Saktiyono, 2009)



Sistem peredaran darah mas mas terdiri atas jantung dan sinus venosus. Jantung ikan terdiri atas dua ruangan, atrium dan ventrikel dan terletak di belakang insang. Sinus venosus adalah struktur penghubung berupa rongga yang menerima darah dari vena dan terbuka di ruang depan jantung. Diantara atrium dan ventrikel jantung terdapat klep untuk menjaga agar aliran darah tetap searah. Peredaran darah ikan disebut sebagai peredaran darah tunggal karena darah dari insang langsung beredar ke seluruh tubuh kemudian masuk ke jantung (Fujaya, 2004).



2.2.1 Komponen Penyusun Darah Ikan Darah terdiri atas sel darah dan plasma darah. Terdapat tiga macam sel darah penyusun darah ikan, yakni sel darah merah (eritrosit), sel darah putih (leukosit), dan trombosit (keping darah). Sel darah merah pada ikan memiliki inti dan berfungsi untuk mengangkut hemoglobin yang membawa dan mengikat oksigen (Fujaya 2004).



Gambar 3. Sel Darah Merah Ikan (Sumber: www.wismabioku.blogspot.com)



4



Sel darah putih (leukosit) pada ikan lebih banyak jumlahnya dibandingkan dengan jumlah sel darah putih yang ada pada manusia. Sel darah putih pada ikan memiliki tujuh bentuk, yaitu tiga tipe eusinofil granulosit dan masing – masing satu tipe neutrofil granulosit, limposit, monosit, dan trombosit (Fujaya 2004).



Gambar 4. Sel Darah Putih Ikan (Sumber: www.cognitiobrevis.blogspot.co.id)



Plasma darah pada ikan terdiri atas protein yang memiliki variasi berat molekul dan fungsi. Perbedaan ini tergantung individu dan lingkungan hidupnya, terutama tekanan osmotik koloid, suhu, maupun pH. Selain itu, plasma darah juga merupakan perantara untuk mentransfor copper, ion, iodine, dan lipid (Fujaya 2004).



2.2.3 Jantung Ikan Jantung pada ikan terdiri atas atrium dan ventrikel, serta terdapat organ tambahan sinus venosus dan bulbus arteriosus. Terdapat dua mekanisme kerja pada jantung, yaitu adrenergenik dan cholinergik. Adrenergenik menyebabkan jantung kontraksi dan cholinergik menyebabkan dan merangsang jantung untuk berelaksasi. Kedua proses ini menyebabkan jantung dapat memompa darah dan mengisinya kembali (Fujaya 2004). Jantung pada ikan terdiri dari dua ruangan yang terletak di bagian posterior lengkung insang, di bagian depan rongga badan dan di atas ithmus. Kedua ruang tersebut adalah atrium (auricle) yang berdinding tipis dan ventrikel yang berdinding tebal. Menurut Irianto (2005) ruangan ini berurutan dari belakang ke depan, yaitu: 1. Sinus Venosus adalah ruang tambahan atau kantung yang berdinding tipis, hampir tidak mengandung jaringan otot. Dinding kaudalnya bersatu dengan bagian depan dari septum transversum, yang memisahkan rongga pericardial dari rongga pleuroperitoneal. Darah dari seluruh tubuh masuk di sinus hepaticus yang masuk padaa dinding posterior dari sinus 5



venosus. Vena coronaria yang datang dari dinding otot jantung, juga masuk dari sinus atrial masuk kedalam atrium. Atau dengan kata lain bahwa kantung berdinding tipis ini berfungsi untuk menampung darah dari vena hepatika yang membawa darah dari vena kardial anterior dan posterior. 2. Atrium adalah ruang tunggal yang dindingnya relatif tipis, terletak anterior dari sinus venosus. Darah dari atrium melalui lubang atrioventikular diteruskan ke dalam rongga ventrikel. Lunang ini dijaga ke dalam ronga ventrikel. Lubang ini dijaga oleh klep atau katup atioventikuler, supaya aliran darah tidak kembali ke rongga atrium. 3. Ventrikel adalah ruang berdinding tebal berotot, menerima darah hanya dari atrium saja dan memompakan darah melalui aorta ventral ke insang. Ruang ini dibentuk oleh dua lapisan otot yaitu lapisan otot luar disebut kortikal dan lapisan otot dalam disebut spongi. Bagian ini menerima darah dari atrium ventrikel tumbuh memanjang dan berdindingg tebal, didalamnya terdapat suatu seri klep semilunar.



Gambar 5. Jantung Ikan (Sumber: www.rebanas.com)



2.2.3. Saluran Darah Ikan Saluran darah pada ikan terdiri atas arteri dan vena. Arteri merupakan saluran yang memiliki dinding tebal, tidak memiliki klep, dan sifatnya kaya dengan gas oksigen karena membawa darah meninggalkan jantung. Sementara vena adalah dinding tipis dibandingkan dengan arteri yang bersifat miskin oksigen karena membawa kembali darah yang sudah dialirkan ke seluruh tubuh menuju jantung kembali. Vena memiliki klep – klep di dalamnya, berbeda dengan pembuluh arteri yang tidak memiliki klep. Adapun kapiler darah atau saluran percabangan yang fungsinya sebagai tempat pertukaran gas pada ikan (Fujaya 2004).



6



Gambar 6. Saluran Darah Ikan (Sumber: www.rebanas.com)



2.3.



Hematokrit Hematokrit adalah istilah yang menunjukan besarnya volume sel-sel eritrosit



seluruhnya didalam 100 mm3 darah dan dinyatakan dalam persen (%). Nilai hematokrit atau “volume sel packed” adalah suatu istilah yang artinya prosentase berdasarkan volume dari darah, yang terdiri dari sel-sel darah merah. Mengukur kadar hematokrit darah hewan uji digunakan tabung mikrohematokrit yang berupa pipa kapiler berlapiskan EDTA (Etil Diamin Tetra Acetat) yang berfungsi sebagai bahan anti pembekuan darah. Nilai hematokrit standar adalah sekitar 45%, namun nilai ini dapat berbeda-beda tergantung spesies. Nilai hematokrit biasanya dianggap sama manfaatnya dengan hitungan sel darah merah total. Darah ikan tersusun atas cairan plasma dan sel-sel darah yang terdiri dari selsel darah merah (eritrosit), sel-sel darah putih (leukosit) dan keping darah (trombosit). Volume darah dari ikan teleostei, heleostei dan chondrostei adalah sekitar 3% dari bobot tubuh, sedangkan ikan chondrocthyes memiliki darah sebanyak 6,6% dari berat tubuhnya (Affandi, 1999). Menurut Dellman dan Brown (1989) menyatakan bahwa apabila terkena infeksi, nafsu makan ikan akan menurun dan nilai hematokrit darah akan menurun. Pada kasus seperti anemia mikrositik, jumlah dan ukuran sel darah merah berkurang, sehingga kadar hematokrit juga rendah. Nilai hematokrit juga dipengaruhi oleh jenis kelamin, ukuran tubuh dan masa pemijahan (Jawad et al. 2004). Kadar hematokrit ini bervariasi tergantung pada faktor nutrisi, umur ikan, jenis kelamin, ukuran tubuh dan masa pemijahan. Nilai hematokrit sebesar 20% berarti dalam darah mengandung 20% sel darah merah (Kuswardani, 2006). Menurut Wedemeyer dan Yasutake (1977) jumlah eritrosit yang tinggi menandakan bahwa ikan dalam keadaan stres. Menurut Lagler et al. (1977) konsentrasi hemoglobin dalam darah berkorelasi kuat dengan jumlah eritrosit. Semakin rendah jumlah eritrosit, maka 7



semakin rendah pula konsentrasi hemoglobin didalam darah. Menurut Robert (1978) Seperti halnya pada hematokrit, kadar eritrosit yang rendah menunjukkan terjadi anemia. Menurut Salasia et al. (2001) menyatakan bahwa nilai hematokrit normal ikan mas antara 30-48%.



2.3.1 Metode Pengukuran Hematokrit Nilai hematokrit atau PCV dapat ditetapkan secara automatik menggunakan hematology analyzer atau secara manual. Metode pengukuran hematokrit secara manual dikenal ada 2, yaitu : 1. Metode Makrohematokrit Pada metode makro, sebanyak 1 ml sampel darah (darah EDTA atau heparin) dimasukkan dalam tabung Wintrobe yang berukuran panjang 110 mm dengan diameter 2.53.0 mm dan berskala 0-10 mm. Tabung kemudian disentrifus selama 30 menit dengan kecepatan 3.000 rpm. Tinggi kolom eritrosit adalah nilai hematokrit yang dinyatakan dalam %. 2. Metode Mikrohematokrit Pada metode mikro, sampel darah (darah kapiler, darah EDTA, darah heparin atau darah amonium-kalium-oksalat) dimasukkan dalam tabung kapiler yang mempunyai ukuran panjang 75 mm dengan diameter 1 mm. Tabung kapiler yang digunakan ada 2 macam, yaitu yang berisi heparin (bertanda merah) untuk sampel darah kapiler (langsung), dan yang tanpa antikoagulan (bertanda biru) untuk darah EDTA/heparin/amonium-kalium oksalat. Prosedur pemeriksaannya, adalah sampel darah dimasukkan ke dalam tabung kapiler sampai 2/3 volume tabung. Salah satu ujung tabung ditutup dengan dempul (clay) lalu disentrifugasi selama 5 menit dengan kecepatan 15.000 rpm. Tinggi kolom eritrosit diukur dengan alat pembaca hematokrit, nilainya dinyatakan dalam persen (%). Metode mikrohematokrit lebih banyak digunakan karena selain waktunya cukup singkat, sampel darah yang dibutuhkan juga sedikit dan dapat dipergunakan untuk sampel tanpa antikoagulan yang dapat diperoleh secara langsung (Affandi, 1999).



2.3.2 Faktor - Faktor yang Mempengaruhi Nilai Hematokrit Faktor-faktor yang mempengaruhi nilai hematokrit adalah sebagai berikut ada diantaranya adalah, jumlah ertirosit pada ikan mas, apabila jumlah eritrosit dalam keadaan banyak (polisetimia) maka nilai hematokrit akan meningkat dan jika eritrosit sedikit (anemia) maka nilai hematokrit akan menurun. Bentuk eritrosit juga mempengaruhi nilai hematokrit, 8



apbila terjadi kelainan bentuk (poikilositosis) maka akan terjadi trapped plasma (plasma yang terperangkap) sehingga nilai hematokrit akan meningkat (Bond, 1979). Ukuran eritrosit mempengaruhi nilai hematokrit yaitu faktor pada pengukuran hematokrit adalah ukuran sel darah merah dimana dapat mempengaruhi viskositas darah. Viskositas yang tinggi maka nilai hematokrit juga akan tinggi (Kuswardani, 2006). Diameter tabung yang bervariasi dapat menyebabkan kesalahan pembacaan sehingga tabung untuk pengukuran hematokrit distandarkan dari Inggris dengan diameter tabung 2.5 mm. Semakin besar diameter tabung maka nilai hasil hematokrit akan rendah (Sir john, 1991).



9



BAB III BAHAN DAN METODE



3.1



Tempat dan Waktu Praktikum yang berjudul Hematokrit Pada Ikan Mas (Cyprinus carpio) ini dilaksanakan



pada hari Rabu, 6 November 2019 di Laboratorium Akuakultur Gedung 2 Lantai 1 Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan Universitas Padjadjaran pukul 15:30 WIB s.d 17.30 WIB. 3.2



Alat dan Bahan Berdasarkan praktikum yang telah dilaksanakan mengenai Hematokrit Pada Ikan Mas



(Cyprinus carpio) digunakan alat dan bahan seperti berikut:



3.2.1 Alat Berikut ini adalah alat yang digunakan saat praktikum: Tabel 1. Alat praktikum



No



Nama Alat



Fungsi



1.



Timbangan



Untuk menimbang bobot tubuh ikan



2.



Diseccting Kit



Untuk membedah ikan yang diuji



3.



Penjepit arteri



Untuk menampung sel darah



4.



Pipa kapiler heparinized



Untuk menampung sampel darah ikan



5.



Sentrifuge hematokrit



Untuk pemisah antara eritrosit dan plasma darah



6.



Lilin malam



Untuk menyumbat ujung pipa yang berisi darah



7.



Hematokrit reading chart



Untuk papan pembaca nilai hematokrit (%)



3.2.2 Bahan Berikut ini adalah bahan yang digunakan saat praktikum: Tabel 2. Bahan praktikum



No



Nama Bahan



1.



Ikan mas



3.3



Fungsi Sebagai objek percobaan yang diuji atau diamati



Prosedur Kerja Kegiatan praktikum harus sesuai standar operasional prosedur, agar hasil yang



diperoleh sesuai dengan yang diharapakan Prosedur kerja dalam praktikum mengenai Hematokrit Pada Ikan Mas (Cyprinus carpio) adalah sebagai berikut: 10



1. Alat dan bahan disiapkan terlebih dahulu. 2. Ikan mas ditimbang bobot tubuhnya. 3. Ikan mas dipegang dengan mulutnya menghadap tubuh lalu ditusuk pada bagian kepala hingga ikan pingsan. 4. Ikan dibedah untuk melihat bagian jantungnya. 5. Aorta ventralis dijepit beberapa menit hingga sinus venosus terisi banyak darah. 6. Jantung ditusuk dengan pipa kapiler sebanyak ¾ bagian. 7. Ujung pipa heparin ditutup dengan ditancapkan pada lilin malam. 8. Pipa heparin dimasukkan kedalam sentrifugasi hematokrit dengan seimbang selama 2 menit dengan kecepatan 3.000 rpm hingga terpisah antara eritrosit dan plasma darah. 9. Pipa kapiler diletakkan di Hematokrit Reading Chart untuk diukur nilai hematokritnya. 10. Alat dan bahan dibersihkan kembali seperti semula.



11



BAB IV HASIL DAN PEMBAHASAN



4.1



Data Kelompok Berdasarkan pengamatan yang telah dilaksanakan oleh kelompok 2 shift 1 mengenai



Hematokrit Pada Ikan Mas (Cyprinus carpio) didapatkan hasil seperti berikut: Tabel 3. Bobot dan Nilai Hematokrit Ikan Mas Kelompok 2



Bobot Ikan (gram)



Nilai Hematokrit (%)



120



5



Hematokrit merupakan pemeriksaan yang digunakan untuk menghitung konsentrasi sel darah merah (perbandingan antara sel darah merah dengan volume darah). Penghitungan nilai hematokrit di dalam darah merupakan metode cepat untuk mendeteksi adanya penyakit pada ikan (Vonti 2008). Berdasarkan hasil yang kelompok 2 pada ikan mas yang memiliki bobot 120 gram didapatkan nilai hematokrit yang menunjukkan nilai angka yang kecil yaitu 5%, angka ini dibawah rata-rata nilai hematokrit pada ikan mas umumnya. Seperti halnya pada hematokrit, kadar eritrosit yang rendah menunjukkan terjadi anemia (Robert, 1978). Menurut Bond (1979), nilai hematokrit pada ikan mas normal berkisar antara 20-30%. Alasan kecilnya hasil yang kelompok kami dapatkan yakni hanya 5% saja, dikarenakan ikan yang dipakai sebagai objek pengamatan bukanlah ikan yang baru diambil dari bak, melainkan menggunakan ikan yang sudah dipakai sebelumnya sehingga kondisi dari ikan tersebut sudah kritis. Kondisi kritis yang dimaksud yakni kondisi darah pada jantung ikan sudah agak membeku dan jantungnya berdetak dengan sangat lambat. Pada percobaan kami yang pertama, kami terlalu sulit menemukan letak dari jantung ikan dikarenakan kurang tajamnya gunting bedah yang digunakan sehingga membuat daging ikan hancur (terkoyak) dan menutupi bagian jantungnya. Akibatnya ikan mas tersebut kehabisan banyak oksigen dan mati. Dikarenakan habisnya stok ikan, maka kami memutuskan untuk mengambil sampel ikan yang sudah digunakan sebelumnya oleh kelompok lain namun dengan kodisi jantung ikan masih berdetak walaupun lambat. Alasan lainnya yakni ikan yang dipakai dalam objek pengamatan pada kelompok kami mengalami anemia. Hasil pengamatan terhadap hematokrit dapat dijadikan sebagai indikator untuk menentukan keadaan kesehatan ikan (Chen, 2004 dalam Hastuti, 2015) . Ikan 12



air tawar dikatakan sehat apabila kadar hematokritnya berkisar antara 22-30%. Apabila hematokrit ikan kurang dari 22% dinyatakan terjadinya anemia, sama halnya apabila nilai hematokrit lebih besar dari 60% menandakan bahwa ikan dalam keadaan stress (Tsuzuki, et al dalam Winarni, 1997). Kadar hematokrit ini bervariasi tergantung pada faktor nutrisi, umur ikan, jenis kelamin, ukuran tubuh dan masa pemijahan (Kuswardani, 2006). Menurut Yanto, et al. (2015) hematokrit adalah persentase sel darah merah dalam darah, bila kadar hematokrit 40% berarti dalam darah tersebut terdiri dari 40% sel darah merah dan 60% plasma dan sel darah putih. Oleh karena itu diketahuinya nilai hematokrit pada kelompok 2 yakni 5%, artinya banyaknya eritrosit pada ikan mas tersebut sebanyak 5% dan sisanya 95% yaitu plasma darah dan sel darah putih (leukosit).



4.2



Data Angkatan Berdasarkan pengamatan yang telah dilaksanakan oleh Kelautan 2019 mengenai



Hematokrit Pada Ikan Mas (Cyprinus carpio) didapatkan hasil seperti berikut: 3.5 3



3



3



Jumlah Ikan (ekor)



3 2.5 2



2



2



2 1.5 1



1



1 0.5



0 0 1-5 %



6-10 %



1115%



16-20 %



21-25 %



26-30 %



31-35 %



36-40 %



41-45 %



Nilai Hematokrit (%)



Gambar 7. Grafik Distribusi Nilai Hematorit Ikan Mas



Pada grafik hasil pengamatan nilai hematokrit yang didapatkan oleh kelompok 1 sampai kelompok 16, didapatkan satu ikan yang memiliki kadar hematokrit sebanyak 5%, tiga ikan yang memiliki kadar hematokrit sebanyak 6-10%, tiga ikan yang memiliki kadar hematokrit sebanyak 11-15%, dua ikan yang memiliki kadar hematokrit sebanyak 16-20%, dua ikan yang memiliki kadar hematokrit sebanyak 21-25%, satu ikan yang memiliki kadar hematokrit sebanyak 26-30%, tiga ikan yang memiliki kadar hematokrit sebanyak 31 - 35% dan dua ikan yang memiliki kadar hematokrit sebanyak 41-45% 13



Berdasarkan data angkatan yang didapatkan dari grafik distribusi nilai hematokrit ikan mas paling tinggi yaitu 41% - 45% dengan jumlah ikan sebanyak dua ekor ikan mas. Sementara nilai hematokrit paling kecil yaitu dengan rentang antara 2% - 20% didapatkan pada sembilan ekor ikan mas. Dengan banyaknya ikan dengan nilai hematokrit yang kecil, dapat diketahui ikan mas tersebut memiliki kondisi anemia, bahkan tidak dalam keadaan sehat. Hasil ini dapat dikarenakan terlalu lamanya praktikan menemukan letak jantung atau salah memotong bagian tubuh sehingga ikan mengalami kehabisan darah atau darahnya membeku, yang mengakibatkan darah yang masuk kedalam pipa tabung kapiler sedikit dan menunjukkan nilai hematokrit yang didapat kecil. Diketahui pula tiga ikan pada percobaan tersebut kondisinya normal atau sehat, karena kadar hematokritnya berkisar 22-30. Menurut Bond (1979), nilai hematokrit pada ikan mas normal berkisar antara 20-30%. Korelasi antara jumlah eritrosit, hemogobin dan hematokrit berhubungan dengan status kesehatan, nutrisi dan pertumbuhan ikan. Ikan dengan pertumbuhan yang baik ditandai dengan jumlah eritrosit, hemoglobin dan hematokrit yang normal. Hemoglobin yang terkandung dalam eritrosit berperan dalam mengikat oksigen yang diperlukan bagi metabolisme seluler semua sel hidup (Ganong, 2005). Sedangkan pada lima ikan dengan nilai hematokrit lebih dari 30% dapat disebabkan karena ikan mengalami stress. Ikan dapat stress apabila dia melakukan metabolisme secara berlebih (Sulmartini et al., 2009). Pernyataan Kuswardani (2006) mengungkapkan bahwa kadar hematokrit ini dapat bervariasi tergantung pada ukuran tubuh, faktor nutrisi, umur, jenis kelamin, dan masa pemijahan. Selaras dengan apa yang diungkapkan oleh Wintrobe (1974) faktor yang mempengaruhi lainnya ialah jumlah eritrosit, apabila jumlah eritrosit dalam keadaan banyak, maka nilai hematokrit akan meningkat. Ukuran eritrosit pun berpengaruh pada viskositas darah. Semakin tinggi viskositas darah maka akan semakin tinggi nilai hematokrit. Kelainan bentuk pada eritrosit juga berpengaruh; apabila terjadi kelainan bentuk (poikilositosis) maka akan terjadi trapped plasma (plasma terperangkap) sehingga nilai hematokrit akan meningkat (Widmann, 1989).



14



45



Nilai Hematokrit (%)



40 y = -0,0399x + 43,842 R² = 0,0032 35



30



25



20 40



50



60



70



80



90



100



110



120



130



Bobot Ikan (gram)



Gambar7. Grafik Hubungan Bobot dengan Nilai Hematokrit Ikan Mas



Berdasarkan grafik diatas didapatkan bahwa bobot ikan mas tidak mempengaruhi nilai hematokrit pada ikan mas dengan hasil yang menunjukkan bahwa nilai hematokrit berbedabeda pada tiap kelompok, yakni rendah, normal dan tinggi. Grafik data angkatan hubungan antara bobot ikan dengan nilai hematokrit menggunakan nilai koefisien determinasi (R square) yang dapat mempredisksi seberapa besar kontribusi pengaruh variabel x terhadap variabel y. Jika nilai R2 mendekati 1 maka sampel tersebut semakin mendekati benar, jika nila R2 mendekati 0 maka sampel tersebut semakin mendekati salah. Nilai R2 = 0,2 dam R2 = 0,3 artinya sampel tidak berpengaruh. Grafik regresi pada Gambar 7, menunjukkan bahwa bobot ikan pada rentang 120 gram memiliki rata – rata nilai hematokrit R2= 0.0032 yang cukup banyak didapatkan pada saat pengamatan. Nilai regresi sebanyak 0,0032 menunjukkan bahwa bobot tubuh pada ikan mas tidak mempengaruhi nilai hematokritnya. Hal tersebut tidak sesuai dengan pernyataan Kuswardani (2006) yakni kadar hematokrit ini bervariasi tergantung pada faktor nutrisi, umur ikan, jenis kelamin, ukuran tubuh dan masa pemijahan. Kadar hematokrit ikan bervariasi tergantung pada factor nutrisi, umur ikan, jenis kelamin, dan masa pemijahan.



15



BAB V SIMPULAN DAN SARAN



5.1



Simpulan Berdasarkan hasil pengamatan yang dilakukan mengenai hematokrit pada ikan mas



didapatkan bahwa ikan yang memiliki nilai hematokrit rendah dengan kisaran 2% - 20% terdapat pada 9 ekor ikan mas, normal dengan kisaran 20% - 35% terdapat pada 6 ekor ikan mas, dan tinggi dengan kisaran 41% - 45% terdapt pada 2 ekor ikan mas. Nilai hematokrit rendah dikarenakan ikan yang mengalami anemia, sedangkan nilai hematokrit yang tinggi dikarenakan ikan yang mengalami stress. Hal ini juga bisa disebabkan karena kesalahan praktikan dalam pengujian ikan. Dari praktikum ini pula dapat diketahui bahwa bobot ikan tidak mempengaruhi nilai hematokrit.



5.2



Saran Ketika proses praktikum sebaiknya digunakan ikan dengan bobot yang lebih besar,



agar didapatkan kadar darah yang lebih banyak sehingga mudah dalam pengambilan sampel. Dalam pengambilan sampel sebaiknya darah langsung di masukkan ke dalam pipa kapiler agar darah tidak membeku. Pada saat proses penutupan tabung heparin menggunakan lilin malam harus lebih padat sehingga saat disentifugasi darah tidak berceceran agar praktikum yang dilaksanakan tidak terhambat dengan kendala.



16



DAFTAR PUSTAKA



Affandi, R., D.S. Sjafei, M.F. Rahardjo, dan Sulistiono. 1992. Iktiologi. Suatu Pedoman Kerja Laboratorium. Departemen Pendidikan dan Kebudayaan. Direktorat Jenderal Pendidikan Tinggi. Pusat Antar Universitas Ilmu Hayat. Institut Pertanian Bogor, Bogor. Bond, C. E. 1979. Biology of Fishes. Saunders College Publishing. Philadelphia. 514 hlm. Dellman, H.D. dan Brown, E.M. 1989. Buku Teks Histologi Veteriner. Penerjemah: Hartono, judul buku asli: Veterinary Histology. Penerbit UI Press. Jakarta. Fujaya



dan Yushita. 2004. Fisiologi Ikan. Perikanan. Jakarta: Penerbit Rineka Cipta.



Dasar



Pengembangan



Teknologi



Ganong, W. F. 2005. Buku Ajar Fisiologi Kedokteran Edisi ke – 22. Jakarta: Kedokteran ECG. Ghufron, M. N. dan Risnawati, R. S. 2010. Teori-teori Psikologi. Yogyakarta: Ar Ruz Media. Hastuti, S. dan Subandiyono. 2015. Kondisi Kesehatan Ikan Lele Dumbo (Clarias gariepinus, Burch) yang Dipelihara dengan Teknologi Biofloc. Semarang: Universitas Diponegoro. Irianto, A. 2005. Patologi Ikan Teleostei. Cetakan Pertama. Yogyakarta: Gadjah Mada University Press. Jawad, L.A., M.A. Al-Mukhtar and H.K. Ahmed. 2004. The Relationship between Haematocrit and Some Biological Parameters of the Indian Shad, Tenualosa ilisha (Family Clupeidae). Animal Biodiversity and Conservation, 27(2):47-52. Khairuman, K. Amri, dan T. Sihombing. 2008. Budidaya Lele Dumbo di Kolam Terpal. Depok: PT. Agromedia Pustaka. Kuswardani, Y. 2006. Pengaruh Pemberian Resin Lebah Terhadap Gambaran Darah Maskoki Carassius Auratus Yang Terinfeksi Bakteri Aeromonas hydrophila. Skripsi. Bogor: Program Studi Budidaya Perairan, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, Institut Pertanian Bogor. Lagler, K. F., J. E. Bardach., R. R. Miller., D. R. M. Passino. 1977. Ichtiology. John Wiley & Sons, Inc. United State of America. Menegristek. 2000. Budidaya Ikan Mas (Cyprinus carpio L). Bidang Pendayagunaan dan Pemasyarakatan Ilmu Pengetahuan dan Teknologi Proyek Pengembangan Ekonomi Masyarakat Pedesaan, Bappenas. Kemal Prihatman (Ed.) Nurjanah. 2009. Analisis Prospek Budidaya Tambak di Kabupaten Brebes. Semarang: Universitas Diponegoro. Roberts, R.J. 1978. The Bacteriology of Teleostei in Fish Pathology. Ballier Tindall London. 205-308 hlm. 17



Rudiyanti, Siti., Astri Ekasari. 2009. Pertumbuhan dan Survival Rate Ikan Mas (Cyprinus Carpio Linn) pada Berbagai Konsentrasi pestisida Regent 0,3G. Jurnal Saintek Perikanan. Vol. 5 No. 1. Hal 49-54. Saanin, H. 1984. Taksonomi dan Kunci Identifikasi Ikan. Jakarta: Binacipta. Salasia, S.I.O., Sulanjari, D., Ratnawati, A. 2001. Studi Hematologi Ikan Air Tawar. Jurnal Biologi. 2:710-723. Saktiyono. 2009. Biologi 2. Jakarta: Erlangga. Sir John. V, D. 1999. Hematologi. Jakarta. Sulmartini, L., Dewi, N. K., Wahyu, T., Thomas, V., Widiyanto dan Juni, T. 2009. Respon Daya Cerna dan Respirasi Benih Ikan Mas (Cyprinus carpio) Pasca Transportasi dengan Menggunakan Daun Bandotan (Ageratum conizoides) sebagai Bahan Anti Metabolik. Jurnal Ilmiah Perikanan dan Kelautan. Vol. 1 (1): 79 – 85. Vonti, O. 2008. Gambaran Darah Ikan Mas (Cyprinus carpio L) Strain Sinyonya yang Berasal dari Daerah Ciampea-Bogor. Skripsi. Bogor: Fakultas Kedokteran Hewan Institut Pertanian Bogor. 60 Hal. Winarni, D. 1997. Diktat Teknik Fermentasi. Surabaya: Program D3 Teknik Kimia FTI-ITS. Widmann, F. K. 1989. Tinjauan Klinis Atas Hasil Pemeriksaan Laboratorium. Jakarta: EGC. Wintrobe, M.M., 1974. Blood Coagulation: Clinical Hematology. M.M. Wintrobe (Ed). Lea & Febiger. Philadelphia. Yanto, H., Hastiadi Hasan, dan Sunarto. 2015. Studi Hematologi untuk Diagnosa Penyakit Ikan Secara Dini Di Sentra Produksi Budidaya Ikan Air Tawar Sungai Kapuas Kota Pontianak. Pontianak: Universitas Muhammadiyah Pontianak.



18



LAMPIRAN



19



Lampiran 1. Alat yang digunakan



Penjepit arteri (Sumber: Dokumentasi pribadi



Jarum sonde (Sumber: Dokumentasi pribadi)



Gunting bedah (Sumber: Dokumentasi pribadi)



Sentrifuge (Sumber: Dokumentasi pribadi)



Nampan (Sumber: Dokumentasi pribadi)



Pipa kapiler (Sumber: Dokumentasi pribadi)



Timbangan (Sumber: https://www.lazada.co.id/ products)



Hematocrit reading chart (Sumber: Dokumentasi pribadi)



Lilin malam (Sumber: Dokumentasi pribadi)



20



Lampiran 2. Bahan yang di gunakan



Ikan mas (Sumber: Dokumentasi pribadi)



21



Lampiran 3. Prosedur Praktikum



Alat dan bahan disiapkan



Ikan Mas ditimbangan menggunakan timbangan



Kepala ikan mas ditusuk pada otaknya hingga mati



Ikan dibedah pada bagian perut sampai terlihat jantung



Aorta Ventralis dijepit hingga sinus venosus terisi penuh oleh darah



Jantung ditusuk dengan pipa kapiler hingga terisi 3/4 bagian



Ujung pipa ditancapkan pada lilin malam



Pipa Kapiler yang sudah terisi dimasukan ke sentrifuge selama 2 menit



Pipa kapiler dihitung di hermatocrit reading chart



Alat dan bahan dibersihkan kembali



22



Lampiran 4. Kegiatan Praktikum



No. 1.



Gambar



Keterangan Ikan mas diambil dari bak



2.



Ikan ditusuk menggunakan jarum sonde



3.



Ikan dibedah



4.



Aorta ventralis dijepit menggunakan penjepit arteri



23



5.



Ditusuk Aorta ventralis menggunakan pipa kapiler heparinized hingga terisi ¾ bagian oleh darah



6.



Setelah ditutup denganl lilin malam pada satu sisinya, pipa diletakan dalam sentrifuge hematokrit secara seimbang. Ditutup sentrifuge atur waktunya selama 4 menit dengan kecepatan 12.000 rpm



7.



Setelah pipa kapiler dikeluarkan, diukur banyaknya eritrosit yang telah terpisah dari plasma darah pada hematokrit reading chart lalu catat



24



Lampiran 5. Data Angkatan Berdasarkan pengamatan yang telah dilaksanakan oleh kelompok 2 dan shift 1 serta shift 2 mengenai Hematokrit Ikan Mas (Cyprinus Caprio) didapatkan hasil seperti berikut:



Kelompok



Bobot (gram)



Nilai Hematokrit (%)



1



26%



2



5%



3



15% dan 20%



4



35%



5



25%



6



10%



7



15%



8



120



42%



9



15%



10



20%



11



20%



12



10% dan 35%



13



25%



14



35%



15



10%



16



42%



25



1



2



2