Nabila Rifa Anisa - 1917021031 - Laporan Kultur Jaringan Tumbuhan 1 [PDF]

Citation preview

PENGENALAN ALAT LABORATORIUM (Laporan Praktikum Kultur Jaringan Tumbuhan)



Oleh Nabila Rifa Anisa 1917021031



JURUSAN BIOLOGI FAKULTAS MATEMATIKA DAN ILMU PENGETAHUAN ALAM UNIVERSITAS LAMPUNG 2021



LEMBAR PENGESAHAN



Judul Percobaan



: Pengenalan Alat Laboratorium



Tanggal Percobaan



: 30 Agustus 2021



Tempat Percobaan



: Metro



Nama



: Nabila Rifa Anisa



NPM



: 1917021031



Prodi



: Biologi



Fakultas



: Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam



Kelompok



: 5 (lima)



Metro, 06 September 2021 Mengetahui, Asisten



Zelfi Julita Dwi Putri NPM.1817021016



I.



PENDAHULUAN



A. Latar Belakang Dalam memulai kegiatan kultur jaringan, khususnya kultur jaringan tumbuhan tentunya diperlukan ruang dan peralatan.Ukuran ruang yang diperlukan dapat disesuaikan dengan volume aktivitas kultur jaringan tumbuhan yang akan dilakukan. Pengenalan alat laboratorium sebagai langkah pertama sebelum melaksanakan sebuah percobaan atau penelitian juga sangat penting dan dibutuhkan. Dengan mengenal macam atau jenis alat laboratorium, percobaan atau penelitian dapat berjalan dengan baik karena kita telah mengetahui fungsi masing-masing bagian dari alat tersebut serta cara penggunaan alat-alat laboratorium tersebut. Sehingga dengan berbekal pengetahuan dalam pemahaman akan fungsi dan cara kerja dari alat yang digunakan, dapat diperoleh hasil suatu percobaan atau penelitian yang maksimal. Melalui pengenalan alat-alat laboratorium dapat diketahui berbagai macam alat yang terdapat di Laboratorium. Selain itu, kita juga dapat meminimalisir resiko kesalahan kerja pada saat melakukan percobaan kultur jaringan tumbuhan. Alat-alat laboratorium memiliki fungsi dan cara kerja yang berbeda antar satu dengan yang lainnya. Sehingga akan menjadi hal yang perlu diperhatikan untuk mengikuti petunjuk dari setiap peralatan laboratorium agar dalam penggunaannya tidak terjadi kerusakan ataupun hal-hal yang berbahaya. Oleh karena itu, berdasarkan uraian di atas maka praktikum pengenalan alat di laboratorium kultur jaringan tumbuhan sangat penting untuk dilakukan sehingga praktikan dapat mengetahui alat-alat yang akan digunakan dalam



laboratorium kultur jaringan tumbuhan dan cara-cara penggunaan dari alat tersebut.



B. Tujuan Percobaan Adapun tujuan dilakukannya praktikum ini adalah sebagai berikut: 1. Praktikan dapat mengetahui fungsi dan cara kerja dari peralatan yang digunakan dalam melakukan kultur jaringan tumbuhan. 2. Praktikan dapat mengenal pembagian ruang-ruang yang terdapat di laboratorium kultur jaringan tumbuhan.



II.



TINJAUAN PUSTAKA



Kultur jaringan adalah salah satu metode yang digunakan dalam pengembangan Bioteknologi Tumbuhan. Metode ini merupakan prosedur pemeliharaan dan pertumbuhan jaringan tanaman (sel, kalus, protoplas) serta organ (batang, akar, embrio) pada kultur aseptis (in vitro). Metode kultur jaringan diantaranya digunakan untuk perbanyakan tanaman, modifikasi genotip (plant breeding), produksi metabolit sekunder, pemeliharaan plasma nutfah, penyelamatan embrio (embryo rescue) (Hartmann dkk., 1997). Terdapat beberapa kelebihan metode kultur jaringan dibandingkan metode yang lain yaitu 1). Metode perbanyakan lebih cepat dibandingkan metode yang lain; 2). Metode ini digunakan untuk perbanyakan tanaman yang sulit diperbanyak dengan metode konvensional; 3). Tanaman hasil kultur jaringan mempunyai jaringan yang lebih kuat dibandingkan metode yang lain ;4). Dapat digunakan untuk memperoleh tanaman yang bebas penyakit dan tidak terbatas oleh musim dalam pelaksanaannya (Pierik, 1977). Metode kultur jaringan dikembangkan untuk membantu memperbanyak tanaman, khususnya untuk tanaman yang sulit dikembangbiakkan secara generatif. Bibit yang dihasilkan dari kultur jaringan mempunyai beberapa keunggulan, antara lain: mempunyai sifat yang identik dengan induknya, dapat diperbanyak dalam jumlah yang besar sehingga tidak terlalu membutuhkan tempat yang luas, mampu menghasilkan bibit dengan jumlah besar dalam waktu yang singkat, kesehatan dan mutu bibit lebih terjamin, kecepatan tumbuh bibit lebih cepat dibandingkan dengan perbanyakan konvensional (Zulkarnain, 2009).



Pembiakan tanaman dengan cara kultur jaringan dapat dibagi menjadi beberapa tahap yang berurutan yaitu (George, 1984): 1) Tahap 0, memilih dan menyiapkan tanaman induk untuk eksplan (Tahap persiapan materi vegetetaif/eksplan). 2) Tahap 1, inisiasi Kultur/culture establishment (tahap induksi). 3) Tahap 2, multiplikasi atau perbanyakan propagul (tahap multiplikasi) 4) Tahap 3, menyiapkan untuk transfer propagul kelingkungan eksternal yaitu pemanjangan tunas, induksi dan perkembangan akar (tahap perakaran). 5) Tahap 4, aklimatisasi plantlet kelingkungan eksternal (tahap aklimatisasi). Kultur jaringan tumbuhan memerlukan ruang dan peralatan dalam pelaksanaan kegiatannya. Ukuran ruang yang diperlukan dapat disesuaikan dengan volume aktivitas kultur jaringan yang akan dilakukan. Ruang yang diperlukan untuk kegiatan kultur jaringan yaitu laboratorium yang ideal yang memiliki: 1.)Ruang persiapan yang di dalamnya terdapat timbangan analitik, lemari pendingin, hotplate, mikrowave, oven, pH meter, alat-alat gelas standar (labu takar, pipet volume, erlenmeyer, gelas piala, batang pengaduk dari gelas, dan wadah kultur), alat untuk mencuci (washtaple), lemari untuk alat dan bahan kimia, sentrifuse, fumehood, destilator, dan kereta dorong; 2.) Ruang transfer yang di dalamnya terdapat laminar air flow, dissecting, mikroskop, alat diseksi, lemari tempat penyimpanan alat-alat steril, dan timbangan kecil. 3.) Ruang kultur yang dilengkapi dengan rak kultur dan lampu fluorescent, timer untuk mengatur lama penyinaran, AC untuk mengontrol temperatur, mikroskop binokuler, dan shaker (Barahima, 2011). Salah satu faktor pembatas dalam keberhasilan kultur jaringan adalah kontaminasi yang dapat terjadi setiap saat dalam masa kultur. Kontaminasi dapat terjadi dari eksplan, baik internal maupun eksternal organisme kecil yang masuk dalam media, air yang digunakan, botol kultur atau alat-alat tanam yang kurang steril, lingkungan kerja serta ruang kultur yang kotor (spora di udara), dan kecerobohan dalam pelaksanaan. Dengan demikian sterilisasi merupakan hal yang sangat



penting dalam kegiatan kultur jaringan. Sterilisasi yang utama harus dilakukan adalah sterilisasi ruang, alat, dan bahan (Gunawan, 1987).



III.



METODE PERCOBAAN



A. Waktu dan Tempat Adapun praktikum mata kuliah Kultur Jaringan Tumbuhan mengenai pengenalan alat laboratorium dilaksanakan pada hari Senin, 30 Agustus 2021 pada pukul 09:10-12:00 WIB melalui platform Zoom, yang bertempat di rumah praktikan di Kelurahan Yosodadi, Kecamatan Metro Timur, Kota Metro, Provinsi Lampung.



B. Alat dan Bahan Adapun alat dan bahan yang digunakan dalam praktikum ini adalah Laminar Air Flow, autoclave, oven, rak kultur, kulkas, cawan petri, botol kultur, gelas ukur, bunsen, pipet tetes, pinset, erlenmeyer, hot plate, Air Conditioner (AC), lampu neon untuk rak kultur, shaker, pH meter, timbangan anlitik, dan pisau diseksi eksplan.



C. Cara Kerja Adapun cara kerja dari praktikum ini adalah sebagai berikut: 1. Mahasiswa melihat dan mengamati alat satu-persatu, dan mendengarkan serta mencatat keterangan yang diberikan oleh asisten tentang alat yang diamati. 2. Mahasiswa menggambarkan alat satu-persatu dan memberinya nama. 3. Mahasiswa memberikan keterangan tentang kegunaan alat dan cara kerja.



4. Mahasiswa menyerahkan hasil pengamatan alat-alat yang dibuat dalam bentuk gambar yang dilengkapi keterangan gambar dan cara kerja alat secukupnya.



IV.



HASIL DAN PEMBAHASAN



A. Data Pengamatan Adapun data pengamatan yang diperoleh dari praktikum ini adalah sebagai berikut: Nama



Gambar



Fungsi



Cara Kerja • Menyalakan lampu



Laminar Air



Untuk menanam



Flow



eksplan ke dalam



UV dengan menekan



botol dalam kondisi



saklar, minimum



steril atau



selama 30 menit



melakukan sub



sebelum laminar air



kultur yang



flow digunakan.



dilengkapi



• Menyiapkan semua



dengan blower dan



peralatan steril yang



lampu UV.



akan dipergunakan. Alat-alat yang dimasukkan ke dalam laminar air flow cabinet disemprot terlebih dahulu dengan alkohol 70% atau menggunakan spiritus. Meja dan dinding dalam LAF juga disemprot



dengan alkohol 70% atau dengan spiritus untuk mensterilkan LAF. • Kemudian, blower pada LAF dihidupkan untuk menjalankan air flow. • Menyalakan lampu dalam LAF dan LAF sudah siap untuk digunakan. Autoclave



Untuk mensterilkan



• Mempersiapkan alat



media, baik media



atau bahan, kemudian



agar atau pun media



memeriksa air di



cair. Juga dapat



dalam chamber.



digunakan untuk



• Setelah itu,



sterilisasi tanah atau



memasang pembatas



kompos yang akan



(saringan) dan



digunakan untuk



menyusun alat atau



media tanaman.



bahan yang sebelumnya sudah dibungkus. • Menutup kembali dan kencangkan pengunci pada autoclave. • Menekan saklar power pada posisi ON dan memilih suhu untuk sterilisasi dengan memutar selektor pemilih suhu



yang kemudian dilanjutkan dengan mengatur timer. • Setelah waktu habis, maka kontaktor timer akan terputus dengan PWM. • Heater akan berhenti bekerja, indikator heater akan mati kemudian membuka control valve untuk membuang uap yang ada di dalam chamber. Oven



Digunakan untuk



• Menghubungkan



sterilisasi botol



dengan sumber listrik



kultur, gunting,



dan memasukkan alat



pinset, pisau, dan



yang akan



lain sebagainya



dikeringkan, lalu



yang digunakan



tutup pintu dengan



dalam kultur



rapat.



jaringan.



• Menghidupkan oven dengan menekan tombol ON sehingga lampu indikator akan menyala. • Kemudian, mengatur temperatur dan waktu yang diinginkan. Bila waktu yang diatur telah selesai, biarkan



temperatur menurun. • Setelah temperatur dingin, keluarkan alat yang disterilkan atau dikeringkan. Rak Kultur



Sebagai tempat



• Menyiapkan botol-



penyimpanan botol



botol kultur yang



kultur yang telah



berisi tanaman.



ditanam.



• Menempatkan botol satu-persatu pada rak kultur secara rapih.



Kulkas



Sebagai tempat



• Menyalakan stop



penyimpanan larutan



kontak pada sumber



kimia dan bagian



listrik.



tanaman yang akan



• Membuka pintu



dikulturkan agar



kulkas dan



tahan lama.



memasukkan bahan kimia atau memdia yang ingin disimpan pada bagian atas, kemudian menutup pintu kulkas.



Cawan Petri



Untuk wadah atau



• Meletakkan medium



tempat memotong



atau eksplan di dalam



eksplan.



cawan petri. • Menutup cawan petri dengan penutup cawan.



Botol Kultur



Sebagai tempat



• Menyiapkan media



untuk



tanam untuk kultur in



mengkulturkan atau



vitro.



menumbuhkan



• Menuangkan media



eksplan.



ke dalam botol-botol kultur yang sudah steril, kemudian ditutup rapat dengan penutup botol yang terbuat dari karet atau dengan alumunium foil. • Selanjutnya, botolbotol yang telah berisi media disterilisasi dengan autoclave. • Setelah selesai, botol kultur diberi label dan diletakkan di rak kultur.



Gelas Ukur



Untuk menuangkan



• Menuangkan larutan



atau mempersiapkan



atau zat kimia dengan



bahan kimia dan



berhati-hati sampai



aquades dalam



skala yang



pembuatan



dibutuhkan.



media, serta mengukur volume zat kimia dalam bentuk cair. Bunsen



Untuk memanaskan



• Menyalakan bunsen



medium,



dan memanaskan



mensterilkan jarum



alat-alat yang ingin



inokulasi dan alat-



digunakan di atas api



alat yang terbuat



sampai pijar.



dari platina dan



nikrom seperti jarum platina dan ose. Pipet Tetes



Pinset



Digunakan untuk



• Menekan bagian



memindahkan



karet dari pipet tetes



sejumlah cairan dari



ini, kemudian bagian



wadah satu ke



ujungnya dimasukkan



wadah yang lain



ke dalam larutan dan



dalam jumlah



melepaskan tekanan



sedikit.



karet tersebut.



Untuk mengambil



• Menjepit bahan yang



dan menjepit



akan diambil dengan



eksplan yang akan



menekan bagian



dikultur dan



tengah dari pinset.



mengurangi paparan mikroba pada oragan atau jaringan yang dijepit. Erlenmeyer



Untuk menyimpan,



• Menuangkan larutan



mereaksikan, dan



atau zat kimia secara



memanaskan



langsung atau dengan



larutan. Erlenmeyer



menggunakan



juga digunakan



corong.



dalam analisis



• Setelah itu,



volumetri dan



erlenmeyer digoyang-



sebagai alat



goyangkan agar



pengukur.



larutan tercampur sampai titik akhir tercapai.



Hot Plate



Untuk homogen dan • Sebelum juga untuk



menggunakan Hot



pemanas. Hot plate



plate, pastikan alat



juga merupakan alat



berada pada posisi



untuk mencampur



yang rata dan aman.



dan memasak media • Kemudian, kultur. Hot plate



menghubungkan



digunakan untuk



instrumen dengan



memasak segala



sumber listrik.



macam bahan nutrisi • Menekan tombol dengan melibatkan



power (ON/OFF) dan



pengaduk dan



mengatur suhu sesuai



pemanas.



yang diinginkan. • Meletakkan wadah (beaker glass) yang berisi bahan yang ingin digunakan di atas lempengan pemanas. • Masukkan stirer ke dalam wadah larutan yang akan diaduk. • Memutar tombol magnetic stirer sampai kecepatan putaran yang diinginkan. • Setelah selesai, putar tombol sampai posisi OFF dan putuskan sambungan listrik.



Air Conditioner (AC)



Untuk menjaga suhu • Menekan tombol ruangan agar tetap



power atau ON/OFF



stabil sesuai dengan



sembari mengarahkan



kondisi suhu



remote ke unit Air



untuk kultur



Conitioner (AC).



jaringan.



• Mengatur suhu dari ruangan kultur sekitar 22˚C . • Meletakkan semua



Lampu



Untuk memberikan



Neon untuk



sumber cahaya pada



bahan pada rak kultur



Rak Kultur



rak kultur.



dan menekan tombol ON. • Kemudian, mengarahkan cahaya lampu pada bahan pada rak kultur. • Menyambungkan steker ke sumber listrik, lalu biarkan selama 30 menit sampai 1 jam. • Setelah itu, mematikan lampu neon dengan memutus sambungan ke sumber listrik.



Shaker



Mesin pengguncang, • Menancapkan power yang digunakan



supply pada sumber



dalam proses



listrik dan tekan



perbanyakan sel atau



tombol ON.



pertumbuhan PLB



• Memasang



(Protocrm Likes



accessories pada



Body) dalam



lubang pemasangan



kegiatan kultur



di plat.



jaringan, setelah



• Memasukkan tabung



dilakukan inokulasi



yang berisi bahan



eksplan.



pada flask clamps dan



menutup alat serta mengatur kecepatan, suhu, dan waktu sesuai dengan yang diinginkan. • Menunggu sampai shaker berhenti dengan sendirinya. • Mematikan shaker ketika sudah selesai dan tekan tombol OFF. Kemudian, mencabut power supply dan bersihkan tempat bahan. pH Meter



Berfungsi untuk



• Menyalakan pH



mengukur pH atau



meter dan biarkan



derajat keasaman



sehingga alat



secara akurat.



melakukan pemanasan. Kemudian, mengatur temperatur sesuai dengan temperatur larutan. • Mencelupkan elektrode ke dalam larutan standar dan mengatur skala pembacaan alat sesuai dengan pH larutan standar. • Mengambil elektrode



tersebut kemudian bilas dengan aquades dan dibersihkan, kemudian celupkan kembali pada larutan standar lain, dan lakukan pengaturan kembali. • Mengambil elektrode tersebut kemudian bilas dengan aquades dan dibersihkan, untuk memastikan pembacaan pH oleh alat telah baik, ulangi proses standarisasi alat kembali. • Setelah pembacaan baik, baru kemudian lakukan pengukuran untuk larutan yang akan diukur pH-nya. • Setelah selesai, mengambil elektrode yang telah terpasang, bilas dengan aquades, dan biarkan tercelup dalam aquades yang baru. Timbangan Analitik



Berfungsi untuk



• Menyiapkan



menimbang nutrisi



timbangan anaitik



yang akan diberikan



dalam kondisi



pada media.



seimbang dan membersihkan ruang dalam timbangan analitik. • Menyambungkan instrumen dengan menancapkan stop kontak pada stavolt. • Menekan tombol ON kemudian tunggu hingga tertera angka 0,0000 g. Lalu memasukkan alas bahan dengan membuka kaca dan menutupnya. • Menekan tombol zero supaya perhitungan lebih akurat. Kemudian, memasukkan bahan yang akan ditimbang dengan membuka kaca dan menutupnya kembali. • Menunggu hingga angka di layar monitor timbangan analitik tidak berubah-ubah dan sesuai dengan massa yang diinginkan.



• Mengambil bahan yang ditimbang dan menekan tombol OFF hinga tidak ada angka di layar monitor. • Setelah itu, melepas stop kontak dari stavolt serta membersihkan ruang dalam timbangan analitik. Pisau



Untuk memotong



• Mensterilkan dalam



Diseksi



atau menyayat suatu



autoclave dan dengan



Eksplan



eksplan



di flamir yaitu pisau dicelupkan dalam alkohol kemudian dibakar di atas api bunsen. • Menyiapkan eksplan, kemudian mengirisnya menggunakan pisau diseksi eksplan.



B. Pembahasan Adapun pembahasan dari praktikum ini adalah sebagai berikut: Laboratorium Kultur Jaringan Tumbuhan terdiri dari ruangan-ruangan yang dipisahkan berdasarkan fungsinya, yaitu ruang persiapan (preparation area), ruang penanaman (transfer area), ruang pertumbuhan (growing area, ruang stok atau media jadi, dan ruang timbang atau bahan kimia. Seberapapun luasnya laboratorium, kelima ruang tersebut harus ada. Kelima ruang di atas



juga harus terpisah dari kebun bibit dan green house untuk menghindari masuknya kontaminasi ke dalam ruang kultur. Kebersihan lantai, meja dan kursi harus terus dijaga secara intensif.



1. Ruang Persiapan (Preparation Area) Ruang persiapan merupakan ruangan yang mempunyai 3 fungsi dasar yaitu untuk membersihkan alat-alat (alat-alat gelas seperti petri, botol, dll), persiapan dan sterilisasi media, dan penyimpanan alat-alat gelas. Sebuah bak untuk mencuci yang dilengkapi dengan kran untuk aliran air mengalir juga diperlukan untuk membersihkan alat-alat berbahan gelas. Selain itu diperlukan meja yang permukaanya dilapisi dengan bahan yang mudah dibersihkan. Peralatan selanjutnya yang digunakan dalam ruang preparasi adalah lemari es untuk menyimpan larutan stok dan beberapa media, timbangan analitik, autoclave, pH meter, magnetic stirrer, destilator. Selain alat di atas, ruangan ini juga dilengkapi dengan alat-alat seperti Hot plate dengan magnetic stirer,Oven, pH meter , kompor gas, labu takar, gelas piala, erlenmeyer, pengaduk gelas, spatula, petridish, pipet, botol kultur, pisau scalpel.



2. Ruangi Penanaman (Transfer Area) Ruang penanaman merupakan ruang yang digunakan untuk isolasi, inokulasi dan subkultur (penjarangan) pada kondisi steril yang di dalamnya terdapat lemari kaca atau kabinet yang disebut Laminar Airflow (LAF). Laminar Air Flow ini digunakan untuk pemotongan eksplan, melakukan penanaman dan subkultur. Akan tetapi jika tidak ada LAF yang memadai, tahap isolasi (pemotongan eksplan) dapat dilakukan di antara kertas saring steril. Sangat dianjurkan untuk menggunakan jas laboratorium yang bersih selama tahap persiapan dan mensterilkan tangan dengan alkohol 96%. Alat-alat seperti scalpel, gunting dan alat-alat inokulasi lainnya harus disterilkan dengan alkohol 96% dan dilanjutkan dengan pemanasan di atas api bunsen. Lampu ultraviolet (UV) juga digunakan untuk mensterilkan ruang, sebelum LAF digunakan.



Pemotongan eksplan juga dilakukan di dalam LAF yang kemudian dilanjutkan dengan beberapa tahapan sterilisasi sebelum ditanam pada media kultur. Selama inokulasi atau penanaman, botol yang berisi media padat pada prinsipnya pada kondisi horisontal, hal ini dilakukan untuk mengurangi kontaminasi, terutama ketika tidak bekerja dalam LAF.



Subkultur atau tahap penjarangan juga dilakukan dalam LAF, dan merupakan tahapan yang perlu dilakukan pada metode kultur jaringan. Ada beberapa alasan perlu dilakukannya subkultur, diantaranya yaitu nutrisi media yang semakin lama semakin berkurang, munculnya browning atau media agar menjadi kecoklatan karena jaringan tanaman kadang mengeluarkan senyawa toksik, atau eksplan membutuhkan tahap perkembangan lebih lanjut.



3. Ruang Pertumbuhan/Inkubasi (Growing Area) Growing area merupakan ruang pertumbuhan atau ruang penyimpanan hasil kultur pada kondisi cahaya dan temperatur yang terkontrol. Ruang pertumbuhan ini terdiri dari rak-rak yang biasanya terbuat dari kaca dan digunakan untuk meletakkan botol-botol kultur setelah proses penanamanan pada ruang isolasi di dalam LAF. Rak-rak yang digunakan untuk inkubasi dilengkapi dengan lampu neon di atasnya sebagai sumber cahaya. Sedangkan ruang pertumbuhan dalam kultur jaringan dilengkapi dengan Air Conditioner (AC) untuk mengontrol suhu ruang.



4. Ruang Stok/Media Jadi Ruangan ini berfungsi sebagai ruang untuk menyimpan media tanam yang sudah disterilisasi menggunakan autoclave. Ruang stok sebaiknya bersuhu rendah dan pencahayaan yang tidak terlalu terang, serta kebersihan ruang harus dijaga. Media tanam diinkubasi pada ruang ruang ini selama 3 hari sebelum digunakan. Hal ini untuk mengetahui kondisi media tanam apakah steil atau terkontaminasi jamur ataupun bakteri. Apabila media terkontaminasi, sebaiknya segera dikeluarkan dan disterilkan menggunakan autoclave selama 1 jam pada tekanan 0.14 Mpa.



5. Ruang Timbang/Tempat Menyimpan Bahan Kimia Ruang ini berisi stok bahan-bahan kimia, timbangan anlitik, magnetic stirer, dan lemari es. Semua kegiatan penimbangan bahan kimia dan pembuatan larutan stok dilakukan di ruangan ini.



V.



KESIMPULAN



Adapun kesimpulan dari praktikum yang telah dilakukan adalah sebagai berikut: 1. Dari hasil praktikum, diketahui terdapat lima pembagian ruangan di laboratorium kultur jaringan tumbuhan. 2. Dari hasil praktikum, diketahui peralatan yang berfungsi sebagai alat sterilisasi meliputi autoclave, oven, dan bunsen. 3. Dari hasil praktikum, diketahui peralatan yang termasuk glassware meliputi gelas ukur, cawan petri, pipet tetes, gelas ukur, dan erlenmeyer. 4. Dari hasil praktikum, diketahui peralatan yang berfungsi sebagai penghomogen meliputi shaker, erlenmeyer, dan hot plate. 5. Dari hasil praktikum, diketahui peralatan yang berfungsi sebagai alat pengukuran meliputi gelas ukur, pH meter, dan timbangan analitik.



DAFTAR PUSTAKA



Barahima, A. 2011. Prinsip Dasar Teknik Kultur Jaringan. Alfabeta. Bandung. George E. F. & Sherington P. D. 1984. Plant Propagation by Tissue Culture. Exegetics Ltd. England.709 P. Gunawan, L. W. 1987. Teknik Kultur Jaringan Tumbuhan. Laboratorium Kultur Jaringan PAU Bioteknologi. Bogor : IPB. Hartmann, H.T., D.E. Kester, F.T. Davies Jr., and R.L. Geneve. 1997. Plant Propagation: Principle And Practices. Sixth Ed. Pierik, R.M.L. 1987. In Vitro Culture of Higher Plants. Martinus Nijhoff Publishers. Dordrecht. The Netherlands. Raharjo. 2017. Pengelolaan Alat Bahan dan Laboratorium Kimia. Jurnal Kimia Sains dan Aplikasi. Vol. 20 (2): 99-104. Zulkarnain, H.2009. Kultur Jaringan Tanaman. Jakarta. PT Bumi Angkasa.