Makalah Kompas [PDF]

Citation preview

LAPORAN AKHIR PRAKTIKUM TEKNIK PEMBENIHAN IKAN PEMIJAHAN BUATAN IKAN PATIN SIAM (Pangasius hypopthalmus) MENGGUNAKAN OVAPRIM Disusun untuk memenuhi tugas laporan akhir praktikum mata kuliah Teknik Pembenihan Ikan semester genap



Disusun Oleh: Kelompok 10 / Perikanan B



Naila Amalia Nadiyah Sapin Yuri Aulia Ramadhan Raudatu F. Safarina Sania Malika Abdurrahman Faris



230110150092 230110150095 230110150117 230110150122 230110150137 230110150154



UNIVERSITAS PADJADJARAN FAKULTAS PERIKANAN DAN ILMU KELAUTAN PROGRAM STUDI PERIKANAN JATINANGOR 2018



KATA PENGANTAR



Puji syukur penulis panjatkan kehadirat Allah SWT karena atas segala rahmat dan karunia-Nya kami dapat menyelesaikan laporan akhir praktikum mata kuliah Teknologi Pengolahan Hasil Perikanan ”Pemijahan Buatan Ikan Patin Siam



(Pangasius



hypopthalmus)



Mengunakan



Ovaprim”.



Penulis



mengucapkan terima kasih kepada semua pihak yang telah memberikan bantuan serta dukungannya dalam pembuatan dan penyusunan laporan ini. Laporan akhir praktikum ini berisikan laporan akhir dari praktikum yang telah dilakukan. Kritik dan saran yang bersifat membangun sangat kami harapkan dalam pembuatan laporan akhir praktikum yang lebih baik. Akhir kata, semoga Allah SWT senantiasa melimpahkan karunia-Nya dan membalas segala amal budi serta kebaikan pihak-pihak yang mebantu penulisan dalam penyelesaian laporan ini.



Penulis



i



DAFTAR ISI BAB



I



II



III



Halaman KATA PENGANTAR .......................................................................... DAFTAR ISI ......................................................................................... DAFTAR TABEL ................................................................................. DAFTAR GAMBAR ............................................................................ DAFTAR LAMPIRAN .........................................................................



i ii iv v vi



PENDAHULUAN 1.1 Latar Belakang ............................................................................ 1.2 Identifikasi Maslah ..................................................................... 1.3 Tujuan ......................................................................................... 1.4 Kegunaan ....................................................................................



1 2 2 2



TINJAUAN PUSTAKA 2.1 Ikan Patin .................................................................................... 2.1.1 Taksonomi dan Morfologi Ikan Patin ........................................ 2.1.2 Habitat dan Kebiasaan Hidup Ikan Patin ................................... 2.1.3 Makanan dan Kebiasaan Makan Ikan Patin ............................... 2.2 Pemijahan Buatan ....................................................................... 2.3 Reproduksi Ikan Patin ................................................................. 2.4 Ovaprim ...................................................................................... 2.5 Hormon-Hormon yang Berperan Dalam Proses Pemijahan Buatan dan Sistem Hormonnya ................................ 2.6 Larva Patin .................................................................................. 2.7 Artemia ....................................................................................... 2.8 Cacing Sutra ................................................................................ 2.9 Pemeliharaan Larva dan Benih Patin .......................................... BAHAN DAN METODE 3.1 Tempat dan Waktu ...................................................................... 3.2 Alat dan Bahan............................................................................ 3.2.1 Alat Praktikum ............................................................................ 3.2.2 Bahan Praktikum......................................................................... 3.3 Tahapan Praktikum ..................................................................... 3.3.1 Persiapan Praktikum ................................................................... 3.3.2 Pelaksanaan Praktikum ............................................................... 3.4 Metode ........................................................................................ 3.5 Parameter yang Diamati.............................................................. 3.5.1 Teknik Pemijahan Ikan Patin Secara Buatan .............................. 3.5.2 Penetasan Artemia ...................................................................... 3.5.3 Kebiasaan Makan Larva Patin .................................................... 3.5.4 SR Larva ..................................................................................... 3.5.5 SR Benih .....................................................................................



ii



3 3 4 4 5 9 11 12 15 15 18 19



21 21 21 21 22 22 22 24 24 24 24 24 24 25



IV



HASIL DAN PEMBAHASAN 4.1 Hasil dan pembahasan kelompok ............................................... 4.1.1 Teknik Pemijahan Buatan Ikan Patin dengan Mengunakan Ovaprim ................................................................ 4.1.2 Teknik Penetasan Artemia .......................................................... 4.1.3 Teknik Pemeliharaan Larva Dan Benih ......................................



V



Penutup 5.1 Kimpulan .................................................................................... 5.2 Saran ...........................................................................................



DAFTAR PUSTAKA ........................................................................... 26 LAMPIRAN .......................................................................................... 28



iii



DAFTAR TABEL



Nomor



Judul



Halaman



1



Ciri-Ciri Induk yang Baik ............................................................... 10



2



Ciri-Ciri Induk Matang Gonad ........................................................ 10



3



Alat yang digunakan dalam praktikum ........................................... 21



4



Bahan-bahan yang digunakan dalam praktikum ............................. 22



iv



DAFTAR GAMBAR Nomor



Judul



Halaman



1



Ikan Patin (Pangasius hypopthalmus) ............................................ 3



2



Artemia sp ...................................................................................... 16



3



Cacing Sutra .................................................................................... 18



v



DAFTAR LAMPIRAN Nomor



Judul



Halaman



1



Dokumentasi Praktikum .................................................................. 28



2



Tahapan Praktikum .......................................................................... 29



vi



BAB I PENDAHULUAN



1.1



Latar Belakang Pengembangan usaha budidaya sangat tergantung pada pengadaan benih.



Semakin meningkat usaha budidaya, maka permintaan benih juga akan semakin meningkat pula. Ikan patin ( Pangasius hypopthalmus. ) merupakan salah komoditas ikan air tawar pendatang baru, yang di datangkan ke Indonesia pertama kali pada tahun 1969, dan mulai berhasil dikembang biakan pada tahun 1972. Di Indonesia berpijah pada musim penghujan antara bulan oktober sampai april setiap tahunnya. Untuk pengembang biakannya baru bisa dilakukan secara buatan atau cara kawin suntik ( induce breeding). Ikan patin merupakan salah satu ikan potensial untuk dikembangkan karena didukung oleh aspek biologi seperti memiliki ukuran yang besar serta fekunditas yang tinggi, pertumbuhannya cepat, tidak memiliki banyak duri dan dapat dipijahkan secara massal. Keunggulankeunggulan tersebut menyebabkan permintaan ikan patin siam terus meningkat, terutama dalam permintaan benih ikan untuk kegiatan budidaya pembesaran ikan. Upaya yang dilakukan untuk memenuhi permintaan benih ikan patin siam, maka harus dilakukan pembenihan ikan patin siam. Gonad sebagai organ reproduksi ikan merupakan salah satu dari 3 komponen yang terlibat dalam reproduksi ikan, selain sinyal lingkungan dan sistem hormon. Dalam proses pematangan gonad, sinyal lingkungan yang diterima oleh sistem saraf pusat ikan itu akan diteruskan ke hipotalamus. Akibatnya, hipotalamus melepaskan hormon GnRH (Gonadotropin realizing hormone) yang selanjutnya bekerja pada kelenjar hipofisa. Akibatnya, hipofisa ini menyekresikan hormon Gondotropin –II yang bekrja pada gonad. Akibat hormon gonadotropin-II, goanad menyintesis hormon steroid pemicu pematangan (naturation inducing steroid) yang menyebabkan inti telur mengalami migrasi dan peleburan, lalu dilanjutkan dengan proses ovulasi. Pemijahan buatan ikan patin menggunakan hormon perlu dilakukan agar mempercepat proses maturasi ikan patin tersebut. Laporan ini menjelaskan



1



2



menganai cara pemijahan buatan pada ikan patin melalui penyuntikan dengan ovaprim.



1.2



Identifikasi Masalah Berdasarkan Latar Belakang diatas, maka masalah yang dapat di



identifikasi adalah sebagai berikut : a. Cara Seleksi induk ikan patin yang baik untuk dipijahkan b. Bagaimana cara pemijahan ikan patin dengan teknik buatan c. Cara Kultur Artemia



1.3



Tujuan Adapun tujuan dari praktikum praktikum pemijahan buatan pada Ikan



Patin yaitu: 1. Mengetahui cara seleksi induk yang baik untuk dipijahkan 2. Mengetahui teknik pemijahan ikan patin secara buatan dengan cara penyuntikan hormon. 3. Mengetahui teknik penetasan larva artemia



1.4



Kegunaan Hasil dari praktikum ini diharapkan dapat memberikan informasi kepada



praktikan maupun pembaca mengenai cara pemijahan buatan pada ikan patin dan cara kultur artemia sebagai pakan alami pada larva patin.



BAB II KAJIAN PUSTAKA



2.1 Ikan Patin 2.1.1 Taksonomi dan Morfologi Ikan Patin Ikan Patin (Pangasius hypopthalmus) Saanin (1984) mengklasifikasi Patin Siam sebagai berikut : Filum Sub Filum Kelas Sub Kelas Ordo Sub Ordo Famili Genus Spesies



: Chordata : Vertebrata : Pisces : Teleostei : Ostariophysi : Siluroidei : Schilbeidae : Pengasius : Pangasius hypopthalmus.



Gambar 1. Ikan Patin (Pangasius hypopthalmus) (Sumber: kuliahikan.co.id) Ikan Patin adalah sekelompok ikan berkumis (Siluriformes) yang termasuk dalam genus Pangasius, familia Pangasiidae. Nama "patin" juga disematkan pada salah satu anggotanya, P. nasutus. Kelompok hewan ini banyak yang bernilai ekonomi, seperti patin dan patin siam (P. hypophthalmus syn. P. sutchi, atau beberapa pustaka menyebutnya jambal siam). Ikan patin memiliki tubuh yang memanjang dan berwarna putih keperakperakan dengan punggung berwarna kebiru-biruan. Tubuh ikan ini memiliki panjang hingga mencapai 120cm, bentuk kepala yang relatif kecil, mulut terletak di ujung kepala bagian bawah, pada kedua sudut mulutnya terdapat dua pasang kumis yang berfungsi sebagai alat peraba yang merupakan ciri khas ikan golongan catfish, dan memiliki sirip ekor berbentuk cagak dan simetris. Ikan patin



3



4



merupakan hewan nocturnal (melakukan aktivitas di malam hari) dan termasuk jenis ikan omnivora (pemakan segala). Ikan patin siam termasuk ikan dasar yang dapat dilihat dari bentuk mulut yang agak ke bawah. Ikan ini cukup responsif terhadap pemberian makanan tambahan. Pada proses budida dalam usia enam bulan ikan patin bisa mencapai panjang 35-40 cm. 2.1.2



Habitat dan Kebiasaan Hidup Ikan Patin Habitat ikan patin adalah di tepi sungai – sungai besar dan di muara-



muara sungai serta danau. Dilihat dari bentuk mulut ikan patin yang letaknya sedikit agak ke bawah, maka ikan patin termasuk ikan yang hidup di dasar perairan. Ikan patin sangat terkenal dan digemari oleh masyarakat karena daging ikan patin sangat gurih dan lezat untuk dikonsumsi (Susanto Heru dan Khairul Amri, 1996). Ikan patin mampu bertahan hidup pada perairan yang kondisinya sangat jelek dan akan tumbuh normal di perairan yang memenuhi persyaratan ideal sebagaimana habitat aslinya. Kandungan oksigen (O2) yang cukup baik untuk kehidupan ikan patin berkisar 2-5 ppm dengan kandungan karbondioksida (CO2) tidak lebih 12,0 ppm. Nilai pH atau derajat keasaman adalah 7,2-7,5, dan ammonia (NH3) yang masih dapat ditoleransi oleh ikan patin yaitu 1 ppm. Keadaan suhu air yang optimal untuk kehidupan ikan patin antara lain 28-29oC. Ikan patin lebih menyukai perairan yang memiliki fluktuasi suhu rendah. Kehidupan ikan patin mulai terganggu apabila suhu perairan menurun sampai 1415oC ataupun meningkat di atas 35oC. Aktivitas patin terhenti pada perairan yang suhunya di bawah 6oC atau diatas 42oC (Djariah 2001). 2.1.3



Makanan dan Kebiasaan Makan Ikan Patin Ikan patin memerlukan sumber energi yang berasal dari makanan untuk



pertumbuhan dan kelangsungan hidup (Djariah, 2001). Patin merupakan ikan pemakan segala (omnivora), tetapi cenderung pemakan daging (carnivora). Susanto dan Amri (2002), menjelaskan di alam makanan utama ikan patin berupa udang renik (crustacea), insekta dan moluska. Sementara makanan pelengkap ikan patin berupa rotifera, ikan kecil, dan daun-daunan yang ada di perairan.



5



Apabila dipelihara di jala apung, ikan patin ternyata tidak menolak diberi pakan, sesuai dengan penelitian Arifin (1993) dalam Cholik et al (2005) yang menyatakan bahwa ikan patin sangat tanggap terhadap pakan buatan. 2.2



Pemijahan Buatan Secara umum, pemijahan ikan di bedakan menjadi pemijahan alami dan



pemijahan buatan. pemijahan alami biasanya di lakukan pada jenis-jenis ikan yang mudah di pijahkan sepanjang tahun seperti ikan mas, tawes, gurami, lele, dan lain sebagainya sebaliknya, pemijahan buatan umunya di lakukan terhadap ikan-ikan yang di pelihara dalam lingkungan yang tidak sesuai dengan faktor lingkunganya di alam. Pemijahan ikan secara buatan adalah pemijahan ikan yang terjadi dengan memberikan rangsangan hormon untuk mempercepat kematangan gonad serta proses ovulasinya dilakukan secara buatan dengan teknik stripping/ pengurutan (Gusrina 2008). Pemijahan buatan sering kali dilakukan terhadap ikan patin (Pangasius pangasius) . Namun, pemijahan buatan sering juga di lakukan pada ikan yang mudah memijah dengan tujuan tertentu, misalnya untuk memper mudah pengontrolan, menekan mortalitas dan lain sebagainya. Ikan patin termasuk jenis ikan yang sulit untuk memijah maupun di pijah dengan buatan. Di habitat aslinya ikan patin dapat memijah secara alami namun kondisi ini belum bisa terjadi pada ikan patin yang dibudidayakan. Kondisi yang demikian menjadi kendala tersendiri dalam pembudidayaan ikan patin. Sampai saat ini ikan patin hanya berpijah sekali dalam setahun pada musim penghujan, dan baru bisa dipijahkan dengan cara pemijahan buatan ( induce breeding ) yaitu dengan jalan menyuntikan hormon tertentu kedalam tubuh induk dengan tujuan untuk merangsang terjadinya pemijahan (ovulasi). Ikan ini sulit memijah di kolam atau wadah pemeliharaan dan termasuk pula ikan yang kawin musiman. Oleh karena itu, pemijahan ikan patin umumnya dilakukan secara buatan. Adapun prosedur teknis dari pemijahan buatan pada ikan patin menurut Sunarma (2007) adalah sebagai berikut: 1.



Pengelolaan induk



6



Pengelolan induk merupakan tahap awal untuk menghasilkan benih yang berkualitas baik sehingga menentukan keberhasilan kegiatan pembenihan ikan. Mutu induk yang baik ditunjang dengan pengelolaan yang tepat diharapkan dapat menghasilkan benih dengan kualitas yang baik dan jumlah yang mencukupi. Kriteria induk yang akan digunakan, antara lain berdasarkan bentuk fisik, ukuran berat, umur dan tingkat kesehatan. Induk betina yang layak dipijahkan telah berumur 3 tahun dan beratnya telah mencapai >2 kg/ekor. Sedangkan induk jantan yang siap dipijahkan telah berumur 2 tahun dan beratnya mencapai 1,5 –2 kg/ekor. Induk yang akan dipijahkan harus sehat secara fisik, yaitu tidak terinfeksi oleh penyakit parasit dan luka akibat benturan, pukulan, goresan, sayatan, dan lain-lain. Induk jantan dan betina dapat dipelihara bersama-sama pada satu kolam atau bisa terpisah dengan kepadatan 3 – 5 ekor/m2 . Induk sebaiknya dibuat dalam beberapa kelompok dan dipelihara secara terpisah untuk dapat digunakan pada proses pemijahan secara bergantian. Kolam pemeliharaan induk dapat berupa kolam tanah atau tembok dan memiliki saluran pemasukan dan pengeluaran air. Kualitas air untuk induk adalah suhu 25 – 30oC, pH 6,0 – 8,5 dan kandungan oksigen terlarut >4 mg/L. Pakan yang diberikan berupa pakan buatan dengan kualitas yang baik dan kuantitas yang mencukupi. Pakan harus memiliki kandungan protein 30 – 35 %. Pemberian pakan dilakukan setiap hari sebanyak 3% bobot biomas/hari dengan frekuensi pemberian pakan 2 – 3 kali/hari. 2.



Seleksi induk Seleksi induk merupakan langkah awal dalam usaha pembenihan ikan.



Langkah ini sangat menentukan keberhasilan pembenihan secara keseluruhan sehingga harus dilakukan secara teliti dan akurat berdasarkan kriteria yang sudah ditentukan. Pada umumnya, induk ikan betina yang telah matang gonad memiliki ciri-ciri yang mudah dibedakan dengan induk ikan jantan atau induk ikan betina yang belum dewasa. Postur tubuh induk ikan betina cenderung melebar dan pendek, perut lembek, halus dan membesar ke arah anus. Urogenital membengkak



7



dan membuka serta berwarna merah tua. Sedangkan postur tubuh induk jantan relatif lebih langsing dan panjang. Alat kelamin (urogenital) membengkak dan berwarna merah tua. Apabila bagian perut dekat lubang kelamin diurut akan mengeluarkan cairan putih kental (cairan sperma). Untuk menjamin pemilihan induk betina yang matang gonad, dapat dilakukan dengan pengukuran diameter telur dan pengamatan pergerakan inti sel telur. Proses ini dapat dilakukan dengan cara melakukan pengambilan telur menggunakan kateter atau kanulator dari kantung telur. Telur yang sudah diambil diletakkan pada larutan sera untuk mengukur diameter telur dan pergerakan inti sel dibawah mikroskop. Telur dari induk yang sudah matang gonad ditandai dengan ukurannya yang relatif seragam, memiliki diameter > 1,0 mm dan pada larutan serra > 80% inti sel bergerak ke pinggir. 3.



Pemijahan Setelah mendapatkan induk yang siap dipijahkan melalui seleksi induk,



tahap selanjutnya adalah memijahkan induk tersebut. Induk yang akan dipijahkan diberok dahulu 1-2 malam untuk mengurangi kadar lemak pada saluran pengeluaran telur dan membuang kotoran/feces. Pemijahan dilakukan secara buatan melalui pemberian rangsangan hormon untuk proses pematangan akhir gonad, pengurutan untuk proses pengeluaran telur dan pembuahan dengan mencampur sperma dan telur. Hormon yang digunakan adalah Ovaprim atau sejenisnya. Standar dosis Ovaprim yang diberikan untuk induk betina adalah 0,5 mL/kg sedangkan untuk jantan adalah 0,2 mL/kg (bila diperlukan). Penyuntikan dilakukan sebanyak dua kali pada bagian intramuskular dengan interval waktu penyuntikan pertama dan kedua sekitar 6 – 12 jam. Penyuntikan pertama sebanyak 1/3 bagian dari dosis total dan sisanya 2/3 bagian lagi diberikan pada penyuntikan kedua. Setelah penyuntikan kedua, 6 – 8 jam kemudian dilakukan pengecekan ovulasi induk. Pengecekan ini akan menentukan saat pengeluaran telur untuk proses pembuahan. Bila pengeluaran telur dilakukan sebelum ovulasi (terlalu cepat waktu), pengeluaran telur tidak akan lancar dan biasanya persentase keberhasilan pembuahan akan kecil. Sedangkan bila terlalu lambat, pembuahan



8



biasanya juga gagal karena air sudah masuk ke dalam kantung telur yang menyebabkan lubang mikrofil pada telur sudah tertutup. Pengecekan ovulasi dilakukan dengan cara melakukan pengurutan pada bagian dekat urogenital secara pelan dan hati-hati. Ovulasi sudah tercapai bila sudah ada sedikit telur yang keluar sehingga pengurutan secara keseluruhan dapat dilanjutkan untuk proses pembuahan. Proses pembuahan didahului dengan penyiapan sperma yang dikeluarkan dari induk jantan. Sperma ditampung dalam wadah dan diencerkan dengan larutan NaCl 0,9% atau larutan Ringer dengan perbandingan sekitar 1 : 100. Sperma yang tercampur urine (air kencing ikan) sebaiknya tidak digunakan. Telur diluarkan dengan melakukan pengurutan induk betina secara hatihati dan ditampung dalam wadah. Tetesan air dalam wadah atau pada telur harus dihindari. Bila dikehendaki, pengurutan dapat dilakukan secara berulang tapi dalam tenggang waktu yang relatif singkat. Telur yang sudah ditampung ditambahkan dengan sperma dan diaduk secara merata. Untuk memudahkan pencampuran telur dan sperma dapat diberi tambahan larutan fisiologis secukupnya. 4.



Penetasan telur Telur yang sudah dibuahi ditetaskan pada tempat yang sudah disiapkan



sebagai tempat penetasan telur. Telur ditebar merata di dasar akuarium dan diusahakan jangan ada telur yang menumpuk, karena telur tersebut akan busuk dan menyebabkan menurunnya kualitas media atau air sehingga dapat mengakibatkan kegagalan penetasan. Aerasi yang cukup untuk menjamin kandungan oksigen terlarut serta suhu perlu diperhatikan agar proses penetasan telur berjalan secara optimal. Pada suhu 29-30oC biasanya telur mulai menetas setelah inkubasi 18- 24 jam. Larva hasil penetasan dapat dipindahkan ke wadah yang lain atau tetap pada wadah yang sama dengan melakukan penggantian air. Proses ini perlu dilakukan karena pada saat penetasan terdapat sisa cangkang telur yang dapat membusuk dan menyebabkan bahan beracun bagi larva. Proses pemindahan larva atau penggantian air harus dilakukan secara hati-hati karena larva masih kritis.



9



5.



Pemeliharaan larva dan benih Larva ikan patin mempunyai sifat kanibal yang tinggi sehingga untuk



menghindarinya perlu diperhatikan waktu untuk pemberian makan. Pakan pertama dapat diberikan sekitar 24 jam setelah menetas pada kisaran suhu pemeliharaan 29-30oC. Pakan yang diberikan berupa nauplii Artemia. Penyiapan Artemia dapat merujuk pada petunjuk produsennya dan biasanya terdapat pada bagian kemasan. Pemberian pakan Artemia selanjutnya dapat dilakukan pada kisaran 4 – 5 jam sekali. Pakan diberikan secara ad libitum atau secukupnya dengan memperhatikan nafsu makan ikan. Penggantian pakan dari Artemia ke cacing rambut dapat dilakukan mulai hari ketujuh dengan memperhatikan bukaan mulut larva. Bila suplai cacing rambut tidak ada, pemberian pakan buatan masih mungkin dilakukan dengan memberikan adaptasi secukupnya. Pemeliharaan larva/benih di akuarium dapat dilakukan sampai umur minimal 10 – 14 hari sebelum dipindah ke dalam bak pendederan. Sedangkan pemindahan benih dari bak ke kolam biasanya dilakukan setelah pemeliharaan 3 – 4 minggu. Pertimbangan pemindahan pemeliharaan dapat disesuaikan dengan kebutuhan. 2.3



Reproduksi Ikan Patin Ikan patin betina mencapai dewasa pada umur tiga tahun, sedangkan



jantan adalah pada umur dua tahun. Pemijahan di alam berlangsung pada musim penghujan yakni sekitar bulan Oktober sampai November (Arifin, 1991 dalam Iis Nurmawanti, 2005). Sistem reproduksi ikan terdiri atas kelamin, gonad, kelenjar hipofisa dan syaraf yang berhubungan dengan perkembangan alat reproduksi (Perangin Angin, 2003 dalam Iis Nurmawanti, 2005). Secara alami sistem kerja reproduksi ikan yakni disebabkan oleh lingkungan perairan, seperti suhu, cahaya dan cuaca yang merangsang hypothalmus sehingga menghasilkan GnRH (Gonadotropin Releasing Hormone). Selanjutnya, GnRH bekerja merangsang pituitari untuk melepaskan GnH (Gonadotropin Hormone) yang berfungsi dalam perkembangan dan pematangan gonad hingga terjadi pemijahan.



10



Adapun ciri – ciri induk yang baik menurut Khairuman (2007) adalah sebagai berikut : Tabel 1. Ciri-Ciri Induk yang Baik No



Induk Betina



Induk Jantan



1



Saat berumur 3 tahun memiliki berat minimal 2 kg



Saat berumur 3 tahun memiliki berat minimal 2 kg



2



Mulai bertelur pada umur 3 tahun, tidak bertelur muda



Mulai mengandung sperma pada umur 2,5 bulan



3 4 5 6 7 8



Bentuk tubuhnya normal, atau tidak Bentuk tubuhnya normal, atau cacat tidak cacat Bertubuh gemuk, atau tidak Bertubuh gemuk, atau tidak kurus kurus Kepala relatif kecil Kepala relatif kecil Tidak luka, dan sehat Tidak luka, dan sehat Bila diraba, kulitnya halus, atau Bila diraba, kulitnya halus, atau tidak kasar tidak kasar Respon terhadap pakan Respon terhadap pakan tambahan tambahan Sedangkan ciri – ciri dari induk patin yang sudah matang gonad menurut



Erlangga (2013) adalah sebagai berikut : Tabel 2. Ciri-Ciri Induk Matang Gonad No 1 2 3 4 5 6



Induk siam betina



Induk Siam Jantan



Umur minimal 2,5 tahun Bobot minimal 2 kg/ekor Perut membesar ke arah anus, terasa empuk, dan halus saat diraba



Umur minimal 1,5 tahun Bobot minimal 1,5



Kulit di bagian perut lembek dan tipis Alat kelamin membengkak dan menonjol berwarna merah tua



Kulit di bagian perut lembek dan tipis Alat kelamin membengkak dan berwarna merah tua



Jika di kanulasi akan keluar telur bebentuk bundar dan berukuran seragam



Jika di striping atau diurut keluar cairan putih atau sperma.



Perut terlihat ramping



Ikan patin tidak memperlihatkan karakteristik eksternal yang jelas, sehingga tidak mudah membedakan induk patin jantan dan betina, apalagi



11



menentukan tingkat kematangan gonadnya. Oleh karena itu, pemeriksaan kematangan gonad ikan patin betina dapat dilakukan dengan kanulasi, yaitu memasukan kateter berdiameter luar 3 mm dan diameter dalam 2,5 mm kedalam lubang genital sedalam 8 sampai 10 cm secara hati-hati,setelah itu ujung kateter ditarik sambil diputar. Kanulasi ini bertujuan untuk mengetahui tingkat kematangan gonad pada induk batina ikan patin dan mengukur keseragaman diameter telur. 2.4



Ovaprim Ovaprim adalah merek dagang bagi hormone analog yang mengandung



20µg analog salmon gonadotropin releasing hormone (s GnRH) LHRH dan 10µg domperidone sejenis anti dopamin, per milliliter (Nandeesha et al, 1990). Ovaprim digunakan sebagai agen perangsang bagi ikan untuk memijah, kandungan sGnRHa akan menstimulus pituatari untuk mensekresikan GtH I dan GtH II. Sedangkan anti dopamin menghambat hipotalamus dalam mensekresi dopamin yang memerintahkan pituatari menghentikan sekresi GtH I dan GtH II dalam kondisi alamiah sekresi gonadotropin dihambat oleh dopamin (Chang dan Peter, 1982), sehingga bila dopamin dihalang dengan antagonisnya maka peranan dopamin akan terhenti dan sekresi gonadotropin akan meningkat. Gonadotropin yang dihasilkan akan menuju gonad dan akan mempercepat terjadinya pematangan oosit pada ikan betina dan pematangan spermatozoa pada ikan jantan (Harker 1992). Secara umum dosis ovaprim yang dipakai untuk merangsang ovulasi pada ikan betina adalah 0,5 ml/kg bobot tubuh sedangkan untuk merangsang spermiasi pada ikan jantan adalah 0,10 - 0,20 ml/kg bobot tubuh (Harker, 1992). Ovaprim termasuk hormon gonadotropin (GTH) semi murni yang diiekstraksikan dan dimurnikan dari hipofisa salmon atau ikan mas (Zairin Jr 2003). Ovaprim dalam tubuh ikan sebagai regulator yang bekerja secara langsung mempengaruhi organ target mensentesis hormon gonadotropin merangsang sekresi follicle stimulating hormon (FSH) dalam tubuh ikan. Rangsangan hormone dari



luar



12



tubuh



adalah



menipulasi



hormonal



berupa



suntikan



dan



implantasi



hormon, tidak lain adalah upaya ”potong kompas” menggantikan sinyal lingkungan. Pematangan gonad ikan di bawah kontrol hipotalamus-hipofisisgonad yang dipengaruhi oleh sinyal lingkungan, sistem hormon dan organ reproduksi. Pematangan gonad ikan adalah proses perleburan inti sel telur (Germinal Vesicle Breakdown, GVBD) yang menyebabkan lapisan folikel akan pecah dan telur dikeluarkan menuju rungga ovari (proses ovulasi). Pada spesies yang tidak memijah secara sepontan di dalam wadah budidaya, manipulasi hormonal mutlak diperlukan (Zairin Jr 2003). Kegunaan Ovaprim antara lain : 1. Menekan musim pemijahan 2. Mengatur kematangan gonad selama musim pemijahan normal 3. Merangsang produksi sperma pada jantan untuk periode waktu yang lama dan volume yang lebih banyak 4. Merangsang pematangan gonad sebelum musim pemijahan 5. Memaksimalkan potensi reproduksi 6. Mempertahankan materi genetic pada beberapa ikan yang terancam punah 7. Mempersingkat periode pemijahan. 2.5



Hormon yang Berperan Dalam Peroses Pemijahan Buatan dan Sistem Hormonnya Hormon merupakan suatu senyawa yang ekskresikan oleh kelenjar



endokrin, dimana kelenjar endokrin adalah kelenjar buntu yang tidak memiliki saluran (Zairin,2002). Kelenjar endokrin terdapat beberapa organ antara lain adalah pituitari, pineal, thymus, jaringan ginjal, jaringan kromaffin, interregnal tissue, corpuscles of stannus, thyroid, ultibranchial, pancreatic islets, intestinal tissue, intestitial tissue of gonads danurohypophysis. Beberapa hormon sangat berperan dalam proses reproduksi ikan , selain hormon primer dan sekunder yang terdapat dalam tubuh ikan adapula hormon luar (sintesis) yang dapat mempengaruhi proses pematangan gonad ikan. (Gusrina 2008). Jenis-jenis hormon diantaranya adalah:



13



a. Kelenjar Hipofisa Kelenjar hipofisa adalah kelenjar yang menghasilkan berbagai hormon, antara hormon yang berkerja terhadap kelenjar kelamin jantan (testes) Maupun kelenjar kelamin betina (kantong telur). Kelenjar hipofisa ini terletak disebelah bawah bagian depan otak besar (dienchephala) sehingga jika bagian otak ini diangkat maka kelenjar ini akan tertinggal. Dengan demikian, untuk mengambil kelenjar hipofisa maka tulang tengkorak harus di angkat terlebih dahulu. Kelebihan dari hormon hipofisa adalah hormon ini bisa disimpan dalam waktu lama sampai dua tahun. Penggunaan hormon ini juga relatif mudah (hanya membutuhkan sedikit alat dan bahan), tidak membutuhkan refrigenerator dalam penyimpanan, dosis dapat diperkirakan berdasar berat tubuh donor dan resepien, adanya kemungkinan terdapat hormon-hormon lain yang memiliki sifat sinergik. Kekurangan dari teknik hipofisasi adalah adanya kemungkinan terjadi reaksi imunitas (penolakan) dari dalam tubuh ikan terutama jika donor hipofisa berasal dari ikan yang berbeda jenis, adanya kemungkinan penularan penyakit, adanya hormon hormon lain yang mungkin akan merubah atau malah menghilangkan pengaruh hormon gonadotropin. Dari beberapa penelitian mengenai hipofisasi didapatkan bahwa dengan dosis rendah, 1 mg hipofisa ikan mas per kg berat badan resipien dapat menginduksi pematangan telur tetapi tidak menyebabkan ovulasi pada goldenperch, maquaria ambigua. Sedangkan dengan dosis tinggi,15 mg/kg menyebabkan penurunan kemampuan menetas dibanding dengan 10 mg/kg dengan kemampuan menginduksi ovulasi adalah 100%. b. LHRH (Luteinizing Hormone-Releasing Hormone) LHRH (Luteinizing Hormon releasing hormon) adalah hormon dari golongan protein yang dihasilkan oleh hipotalamus. Hormon ini molekulnya sangat kecil dibandingkan dengan hormon golongan lainnya, yakni terdiri dari 10 asam amino (dekapeptida). LHRH sebanarnya sama persis dengan GnRH. Karena LHRH waktu paruhnya pendek sehingga mudah terurai dari dalam tubuh maka para ahli menciptakan LHRH sintesis yang lebih tahan. LHRH jenis ini sering



14



dikenal dengan LHRH-analog (LHRH-a). jika hormon yang digunakan adalah LHRH, berarti manipulasi yang dilakukan berada pada tingkat hipofisa. LHRH-A telah berhasil digunakan dalam menginduksi pemijahan ikan Mas, sidat, salmon, sturgeon, dan lain-lain. Di Indonesia pemakaian LHRH-A telah berhasil digunakan dalam menginduksi pemijahan ikan Bandeng. Penggunaan LHRH-A pada ikan tidak saja melalui penyuntikan tetapi juga dengan implantasi menggunakan pellet cholesterol atau implantsilicone rubber. Dengan teknik ini dapat mensuplai LHRH-A dalam waktu lama tanpa penanganan berulang-ulang pada ikan dan memungkinkan induksi pematangan gonad dan pemijahan yang lebih cepat (Lam 1985). c. 17-a-methyltestosteron Aplikasi hormon ini untuk menjantankan atau membetinakan semua benih ikan yang akan dibudidayakan, telah dilakukan pada beberapa jenis ikan, antara lain ikan mujair, karper, mas koki, dan lain-lain. Caranya dengan menambahkan metiltestosteron pada pakan dengan dosis 15-60 mg/kg pakan dapat menghasilkan 100% jantan. Sedangkan untuk membetinakan benih dapat dilakukan dengan penambahan hormone-hormon estrogenic, sepertiestron, estriol, estradiol. Namun hasil yang dicapai tidak segemilang menjantankan benih. Hormon ini juga digunakan untuk meningkatkan laju pertumbuhan melalui aplikasi hormon, juga telah banyak dilakukan, yakni dengan meningkatkan nilai konversi makanan. McBride dan Fegerlund (1973 dalamMatty,1985), telah berhasil menggunakan methyltestosteron untuk mempercepat pertumbuhan juvenile ikan salmon. d. Feromon Feromon adalah bahan kimia disekresi dan disampaikan ke reseptor pembau dengan reaksi yang spesifik. Fungsi feromon ikan dapat dibagi tiga,yakni: (1) Sebagai alarm dan pengenalan spesies (2) Untuk pengenalan seks dan perubahan tingkah laku seksual (3) Untuk pengenalan wilayah e. HCG (Human Chorionic Gonadotropin)



15



HCG juga berperan dalam memacu terjadinya ovulasi, seperti pada ikan Goldfish, penyuntikan hormon human chorionic gonadotropin (hCG) akan menyebabkan sintesis indomethanin (prostaglandin inhibitor) terhambat sehingga Prostaglandin dapat mendorong ovulasi ikan trout pelangi dan Goldfish. Prostaglandin berperan penting dalam menstimulasi ovulasi ikan teleostei pada tahap akhir. (Jalabert dan Szollosi, 1975 dalam Stacey, 1984). 2.6



Larva Patin Standar awal pemeliharaan induk adalah menghasilkan larva yang sehat.



Larva yang sehat diperoleh dari induk yang dipelihara secara baik yakni mendapat pakan yang bermutu dan memenuhi syarat sebagai pakan induk dan dipelihara dalam wadah dengan kualitas air yang baik. Larva ikan patin lebih bersifat karnivora dan memakan Brachionus sp, Crustacea, dan Cladocera. Sementara itu ikan yang dalam stadium larva yang baru habis kuning telurnya mempunyai sifat kanibal yang tinggi (Susanto 2006). Menurut Sunarma (2007), pakan pertama dapat diberikan sekitar 24 jam setelah menetas pada kisaran suhu pemeliharaan 29 – 30 °C. Pakan yang diberikan berupa nauplii Artemia. Pemeliharaan larva atau benih di akuarium dapat dilakukan sampai minimal umur 10 – 14 hari sebelum dipindahkan ke dalam bak pendederan. 2.7



Artemia Artemia merupakan pakan alami yang sangat penting dalam pembenihan



ikan laut, krustacea, ikan konsumsi air tawar, dan ikan hias. Ini terjadi karena Artemia memiliki nilai gizi yang tinggi, serta ukuran yang sesuai dengan bukaan mulut hampir seluruh jenis larva ikan. Artemia dapat diterapkan di berbagai pembenihan ikan dan udang, baik itu air laut, payau, maupun tawar. Menurut Bougis (1979) dalam Kurniastuty dan Isnansetyo (1995), klaisifikasi dari artemia adalah sebagai berikut: Filim : Anthropoda Kelas : Crustacea Subkelas Branchiopoda Ordo : Anostraca



16



Famili Genus Spesies



: Artemidae : Artemia : Artemia salina



Gambar 1. Artemia sp. (Sumber: en.wikipedia.org) Artemia merupakan plankton yang biasa hidup di air artemia ini merupakan zooplankton. Artemia merupakan jenis crustaceae tingkat rendah dari phylum arthropoda yang memiliki kandungan nutrisi cukup tinggi seperti karbohidrat, lemak, protein dan asam-asam amino. Benih ikan dan udang pada stadium awal mempunyai saluran pencernaan yang masih sangat sederhana sehingga memerlukan nutrisi pakan jasad renik yang mengandung nilai gizi tinggi. Nauplius artemia mempunyai kandungan protein hingga 63 % dari berat keringnya. Selain itu artemia sangat baik untuk pakan ikan hias karena banyak mengandung pigmen warna yang diperlukan untuk variasi dan kecerahan warna pada ikan hias agar lebih menarik. Kista Artemia sp. yang ditetaskan pada salinitas 15-35 ppt akan menetas dalam waktu 24-36 jam. Larva artemia yang baru menetas dikenal dengan nauplius. Nauplius dalam pertumbuhannya mengalami 15 kali perubahan bentuk, masing-masing perubahan merupakan satu tingkatan yang disebut instar. Pertama kali menetas larva artemia disebut Instar I.Nauplius stadia I (Instar I) ukuran 400 mikron, lebar 170 mikron dan berat 15 mikrongram, berwarna orange kecoklatan. Setelah 24 jam menetas, naupli akan berubah menjadi Instar II, Gnatobasen sudah berbulu, bermulut, terdapat saluran pencernakan dan dubur. Tingkatan selanjutnya, pada kanan dan kiri mata nauplius terbentuk sepasang mata majemuk. Bagian samping badannya mulai tumbuh tunas-tunas kaki, setelah instar XV



17



kakinya sudah lengkap sebanyak 11 pasang. Nauplius menjadi artemia dewasa (Proses instar I-XV) antara 1-3 minggu. Telur artemia yang kering atau kista berbentuk bulat cekung, berwarna coklat, berdiameter 200 – 300 mikron dan di dalamnya terdapat embrio yang tidak aktif. Nauplius artemia mempunyai tiga pasang anggota badan yakni antenna I yang berfungsi sebagai alat sensor, antena II berfungsi sebagai alat gerak atau penyaring pakan dan rahang bawah belum sempurna. Di bagian kepala antara ke dua antenna terdapat bintik merah (ocellus) yang berfungsi sebagai mata nauplius. Artemia dewasa berukuran 1 – 2 cm dengan sepasang mata majemuk dan 11 pasang thoracopoda. Setiap thoracopoda mempunyai eksopodit, endopodit dan epipodit yang masing-masing berfungsi sebagai alat pengumpul pakan, alat berenang dan alat pernapasan. Pada yang jantan, antenna II berkembang menjadi alat penjepit dan pada bagian belakang perut terdapat sepasang penis. Pada yang betina, antenna menjadi alat sensor dan pada kedua sisi saluran pencernaan terdapat sepasang ovari. Telur-telur yang telah masak dipindahkan dari ovari ke dalam sebuah kantong telur atau uterus (Sumeru, 1984). Pada tiap tahapan perubahan instar nauplius mengalami moulting. Artemia dewasa memiliki panjang 8-10 mm ditandai dengan terlihat jelas tangkai mata pada kedua sisi bagian kepala, antena berfungsi untuk sensori. Penetasan Cystae Artemia Penetasan cystae artemia dapat dilakukan dengan 2 cara, yaitu penetasan langsung dan penetasan dengan cara dekapsulasi. Cara dekapsulasi dilakukan dengan mengupas bagian luar kista menggunakan larutan hipoklorit tanpa mempengaruhi kelangsungan hidup embrio. Cara dekapsulasi merupakan cara yang tidak umum digunakan pada panti-panti benih, namun untuk meningkatkan daya tetas dan meneghilangkan penyakit yang dibawa oleh cytae artemia cara dekapsulasi lebih baik digunakan (Pramudjo dan Sofiati, 2004). Pengayaan Artemia Pengayaan (enrichment) artemia dengan menggunakan beberapa jenis pengkaya misalnya scout emultion, selco atau vitamin C dan B kompleks powder dilakukan selama 2 jam. Selanjutnya diperjelas oleh Subyakto dan Cahyaningsih



18



(2003) bahwa pengayaan pakan alami menggunakan minyak ikan, minyak cumicumi, vitamin ataupun produk komersial lainnya membutuhkan waktu 2-4 jam untuk mendapatkan hasil yang baik. Dekapsulasi Artemia Dekapsulasi merupakan suatu proses untuk menghilangkan lapisan terluar dari kista artemia yang keras (korion). Proses ini dilakukan untuk mempermudah bayi artemia untuk keluar dari sarangnya. Dan kalaupun tidak berhasil menetas, kista yang telah didekapsulisasi masih bisa diberikan kepada ikan/burayak dengan aman, karena korionnya sudah hilang, sehingga akan dapat dicerna dengan mudah. 2. 8



Cacing Sutra Cacing Sutra (Tubifex sp.) mengandung gizi sangat dibutuhkan sebagai



pakan alami dalam kegiatan unit perbenihan, terutama pada fase awal (larva) karena memiliki kandungan nutrisi (protein 57% dan lemak 13%) yang baik untuk pertumbuhan ikan dan ukurannya sesuai dengan bukaan mulut larva, disamping itu harganya lebih murah dibanding artemia. Klasifikasi Cacing Sutra Cacing sutra (Tubifex sp), menurut Gusrina (2008) memiliki klasifikasi sebagai berikut : Filum Kelas Ordo Famili Genus Spesies



: Annelida : Oligochaeta : Haplotaxida : Tubifisidae : Tubifex : Tubifex sp



19



Gambar 2. Cacing Sutra (Sumber: Bibitikan.Net) Cacing ini mudah dikenali dari bentuk tubuhnya yang seperti benang sutra dan berwarna merah kecoklatan karena banyak mengandung haemoglobin. Tubuhnya sepanjang 1 – 2 cm, terdiri dari 30 – 60 segmen atau ruas. Cacing sutra (Tubifex sp) ini bersifat hermaprodit, pada satu organism mempunyai dua alat kelamin. Cacing ini dapat dibudidayakan dan digunakan langsung untuk larva ikan. Cacing ini dapat juga di simpan dalam bentuk beku (fresh) maupun kering (oven). 2. 9



Pemeliharaan Larva dan Benih Patin Larva ikan patin yang baru menetas masih lemah. Organ tubuhnya baru



terbentuk dan belum sempurna. Inilah masa kritis bagi larva. Agar bisa hidup dengan baik, organ tubuhnya bisa sempurna, dan masa kritis maka larva itu harus dipelihara. Pemeliharaan larva dapat dilakukan pada akuarium yang sama. Tetapi biasanya larva yang ditebar dalam akuarium terlalu padat. Karena sebagian larva harus dikurangi, yaitu dengan memindahkan ke akuarium yang lain. Satu hal yang harus diperhatikan adalah kepadatan dalam setiap akuarium. Jangan sampai kepadatannya terlalu tinggi atau terlalu rendah. Kepadatan didasarkan pada volume air dalam akuarium. Bisa juga didasarkan pada volume satu liter. Kepadatan yang optimal dalam pemeliharaan larva patin adalah 100 ekor setiap liternya. Bagi pembudidaya lama, kepadatan dalam setiap akuarium dapat ditetapkan dengan melihat langsung pada akuarium itu. Tetapi bagi yang baru harus menghitung dulu. Larva ikan patin berkembang setiap saat, mulai dari organ hingga sifatsifatnya. Demikian juga dengan sifat makannya. Setelah menetas, organ tubuh larva belum sempurna. Pada saat itu larva tidak makan, tetapi akan menghabiskan kuning telur sebagai makanan cadangannya. Itu berlangsung selama kurang lebih dua hari, tergantung suhu. Karena itu larva tidak perlu diberi pakan tambahan. Setelah habis kuning telur, baru larva mulai makan. Saat itu, larva harus doberi pakan tambahan, kalau tidak sifat kanibalismenya akan muncul dan larva-



20



larva itu bisa memakan temannya sendiri. Tetapi ukuran pakan itu harus lebih kecil dari bukaan mulutnya. Selain itu kandungan gizinya, terutama protein harus tinggi. Salah satu jenis pakan yang bisa diberikan adalah naupli atau larva artemia (udang laut). Tetapi naupli artemia itu harus dikultur terlebih dahulu. Pakan pertama dapat diberikan sekitar 24 jam setelah menetas pada kisaran suhu pemeliharaan 29-30oC. Pakan yang diberikan berupa nauplii Artemia. Penyiapan Artemia dapat merujuk pada petunjuk produsennya dan biasanya terdapat pada bagian kemasan. Pemberian pakan Artemia selanjutnya dapat dilakukan pada kisaran 4 – 5 jam sekali. Pakan diberikan secara ad libitum atau secukupnya dengan memperhatikan nafsu makan ikan. Penggantian pakan dari Artemia ke cacing rambut dapat dilakukan mulai hari ketujuh dengan memperhatikan bukaan mulut larva. Bila suplai cacing rambut tidak ada, pemberian pakan buatan masih mungkin dilakukan dengan memberikan adaptasi secukupnya. Pemeliharaan larva/benih di akuarium dapat dilakukan sampai umur minimal 10 – 14 hari sebelum dipindah ke dalam bak pendederan. Sedangkan pemindahan benih dari bak ke kolam biasanya dilakukan setelah pemeliharaan 3 – 4 minggu. Pertimbangan pemindahan pemeliharaan dapat disesuaikan dengan kebutuhan (Sunarma 2007).



BAB III BAHAN DAN METODE



3.1



Tempat dan Waktu Praktikum pemijahan Buatan dilaksanakan di Hatchery Ciparanje Fakultas



Perikanan dan Ilmu Kelautan Universitas Padjadjaran, di Laboraturium Akuakultur, dan Laboratorium Ex SBA Gedung 2 Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan Universitas Padjadjaran yang dilaksanakan pada tanggal 6 April 2018 sampai 13 Mei 2018. 3.2 3.2.1



Alat dan Bahan Alat Praktikum Adapun alat-alat yang digunakan dalam praktikum ini adalah sebagai



berikut: Tabel 3. Alat yang digunakan dalam praktikum Nama Alat Waring Serok Bak penetasan Akuarium pemeliharaan Heater Peralatan aerasi Plastik trashbag Botol plastik 1,5 liter Spuit Mangkuk Beacker glass Petridisk Handuk Gelas pelastik Handcounter Timbangan digital 3.2.2



Fungsi Wadah penyimpanan induk sementara Alat menhambil induk Wadah penetasan telur Wadah pemeliharaan larva dan benih Menaikan suhu pada media pemeiharaan Instalasi suplai udara pada media pemeliharaan Plastik hitam penutup wadah pemeliharaan Wadah penetasan aertemia Suntikan 5 ml Wadah telur setelah streaping Wadah spperma setelah streaping Wadah sapel larva Alas membungkus induk ketika streaping Wadah pengamatan larva Menghitung jumlah larva dan artemia Menimbang sampel ikan, garam dan artemia



Bahan Praktikum Adapun bahan-bahan yang digunakan dalam praktikum ini adalah sebagai



berikut:



21



22



Tabel 4. Bahan-bahan yang digunakan dalam praktikum Nama bahan Fungsi Induk jantan Induk patin jantan siap pijah yang sudah mengeluakan sperma Induk betina Induk patin betina yang sudah matang gonad Hormon Chorionic Gonadotropin, berpedan dalam HCG/chorulon pemecahan dinding folikel Ovaprim Hormon analog merangsang teerjadinya ovulasi Artemia Pakan larva ikan patin Garam korosok Meningkatkan salinitas media penetasan artemia Cacing sutra Pakan benih patin Pakan komersil Pakan benih patin Nacl Larutan fisiologis pengencer sperma Aquabides Pengenceran ovaprim Kalium permanganat, oksidator untuk membunuh ektoparasit Pk dan bakteri Tanahliat/air susu Menghilangkan sifat adhesive telur



3.3



Tahapan Praktikum



3.3.1



Persiapan Praktikum Adapun yang termasuk ke dalam tahap-tahap persiapan praktikum ini



adalah sebagai berikut: a)



Seleksi Induk 1. Disurutkan air kolam sampai 30% 2. Dilakukan penjaringan induk dengan plastic bag 3. Diperiksa kelengkapan organ tubuh dan kesehatan induk 4. Dipindahkan induk ke kolam induk untuk proses pemberokan



b)



Pengecekan Kematangan Gonad Induk Patin Hanya meliputi proses dimasukkannya indukan patin ke dalam kolam



inkubasi dan diberok selama 8-12 jam 3.3.2



Pelaksanaan Praktikum Adapun yang termasuk ke dalam tahap-tahap persiapan praktikum ini



adalah sebagai berikut: a)



Penyuntikan 1. Disuntik ikan yang telah diberok selama 8 jam dengan hormon HCG (penyuntikan pertama)



23



2. Disuntik ikan setelah 24-26 jam setelah penyuntikan pertama dengan hormone ovaprim 3. Dimasukkan kembali indukan ke dalam kolam inkubasi b)



Stripping 1. Distripping induk yang telah siap memijah 2. Diangkat dan dikeringkan terlebih dahulu indukan dengan handuk untuk menghindari masuknya air ke dalam waktom 3. Diurut bagian perut induk betina ke arah papila 4. Ditampung telur dengan menggunakan waskon yang telah dikeringkan sebelumnya 5. Dimasukkan sperma yang telah distripping lebih dulu ke dalam telur dan diaduk dengan menggunakan bulu ayam atau benda halus lainnya sampai sperma dan telur tercampur merata 6. Dibuang air dan telur dicuci 2-3 kali dengan menggunakan air bersih untuk membuang sisa sperma dan lendir 7. Dicuci telur dengan menggunakan larutan tanah liat



c)



Penetasan Telur 1. Dicuci bersih telur yang telah terbuahi kemudian dimasukkan ke dalam wadah penetasan 2. Dilihat telur yang menetas setelah 18 jam dari pembuahan



d)



Pemeliharaan Larva 1. Ditebar larva dengan padat tebar minimal yaitu 15 ekor/liter dan maksimal yaitu 40 ekor/liter 2. Dilakukan pemberian pakan dilakukan setelah 36 jam dari penetasan 3. Diberikan pakan tambahan yang diberikan pertama kali kepada larva adalah artemia selama 7 hari 4. Diberikan pakan cacing sutera (cacing tubifex) setalah benih berumur 7 hari 5. Dilakukan pemberian pakan buatan atau pellet setelah umur benih berumur >14 hari



24



3.4



Metode Metode yang digunakan dalam praktikum ini menggunakan metode



eksperimental dan dianalisis secara deskriptif.



3.5



Parameter yang Diamati



3.5.1 Teknik Pemjahan Ikan Patin Secara Buatan Adapun prosedur teknis dari pemijahan buatan pada ikan patin menurut Sunarma (2007) adalah sebagai berikut: 1.



Pengelolaan induk



2.



Seleksi induk



3.



Pemijahan



4.



Penetasan telur



5.



Pemeliharaan larva dan benih



3.5.2



Penetasan Artemia Kista Artemia sp. ditetaskan pada salinitas 15-35 ppt dan akan menetas



dalam waktu 24-36 jam. Larva artemia yang baru menetas dikenal dengan nauplius.



3.5.3 Kebiasaan Makan Larva Patin Larva yang baru habis kuning telurnya mempunyai sifat kanibal yang tinggi. Pakan pertama dapat diberikan sekitar 24 jam setelah menetas. Pakan yang diberikan berupa nauplii Artemia. Pemberian pakan Artemia selanjutnya dapat dilakukan pada kisaran 2 – 4 jam sekali. Pakan diberikan secara ad libitum atau secukupnya dengan memperhatikan nafsu makan ikan. Penggantian pakan dari Artemia ke cacing sutra dapat dilakukan mulai hari ketujuh dengan memperhatikan bukaan mulut larva.



3.5.4 SR Larva -



Seluruh larva diambil dari akuarium



25



-



Hitung jumlah larva yang masih hidup dan dibandingkan dengan jumlah larva awal Rumus untuk menghitung Survival Rate larva adalah sebagai berikut : 𝐒𝐑 =



Dimana



3.5.5



:



𝐍𝐭 × 𝟏𝟎𝟎% 𝐍𝐨



SR



= Survival Rate



Nt



= Jumlah larva di akhir (yang hidup)



No



= Jumlah larva di awal



SR benih



-



Seluruh benih diambil dari akuarium



-



Hitung jumlah benih yang masih hidup dan dibandingkan dengan jumlah larva awal Rumus untuk menghitung Survival Rate larva adalah sebagai berikut : 𝐒𝐑 = Dimana



:



𝐍𝐭 × 𝟏𝟎𝟎% 𝐍𝐨



SR



= Survival Rate



Nt



= Jumlah benih di akhir (yang hidup)



No



= Jumlah benih di awal



BAB IV HASIL DAN PEMBAHASAN



4.1



Hasil dan pembahasan Kelompok



4.1.1



Teknik Pemijahan Buatan Ikan Patin Ikan patin merupakan ikan yang sulit memijah jika tidak di habitat aslinya.



Ikan patin memiliki kebiasaan memijah sekali setahun. Pemijahan biasanya terjadi pada musim hujan (bulan November-Maret). Ikan patin sulit memijah di kolam atau wadah pemeliharaan dan termasuk ikan yang kawin musiman. Pemijahan ikan patin umumnya dilakukan secara buatan karena belum ada yang berhasil memanipulasi lingkungan untuk membujuk ikan patin mau memijah secara alami (Susanto dan Amri 1996). Hal yang pertama dilakukan dalam budidaya ikan patin adalah melakukan seleksi induk yang memenuhi kriteria. Untuk pemijahan dipilih induk betina patin yang siap pijah yaitu memiliki ciri-ciri perut yang terasa lembek dan membesar ke arah anus, urogenital yang membengkak dan berwarna merah tua, lalu dilakukan striping. Untuk melihat kematangan gonadnya dan dilakukan pengecekan diameter telur dan juga pergerakan inti sel telurnya. Untuk induk ikan jantan dipilih yang urogenital yang membengkak dan berwarna merah tua, jika pada bagian perut di striping maka akan keluar cairan putih (sperma). Untuk pemberian rangsangan dilakukan melalui pemberian hormon ovaprim. Untuk ikan betina dilakukan dua kali penyuntikan. penyuntikan yang pertama untuk maturasi dan penyuntikan ke dua untuk ovulasi. Kebutuhan ovaprim yang diberikan untuk induk betina adalah 2,2 ml/kg sedangkan untuk jantan adalah 1,25 ml/kg. Penyuntikan dilakukan dua kali, penyuntikan pertama dilakukan untuk merangsang terjadinya pematangan gonad pada induk ikan patin dan penyuntikan kedua dilakukan pada induk betina yang bertujuan untuk merangsang terjadinya ovulasi pada induk betina ikan patin, jarak waktu penyuntikan satu dengan penyuntikan kedua kurang lebih 8-9 jam. Setelah 8-9 jam dari waktu penyuntikan kedua dilakukan proses fertilisasi dengan cara mencampurkan sperma dan telur pada wadah baskom, kemudian telur yang telah difertilisasi ditebar pada bak



26



27



penetasan. Penyuntikan pertama sebanyak 1/3 bagian dari dosis total dan sisanya 2/3 bagian lagi diberikan pada penyuntikan kedua (Sunarma ade 2007). Pengecekan ovulasi dilakukan setelah 6 – 8 jam dari penyuntikan kedua. Pengecekan ini akan menentukan saat pengeluaran telur untuk proses pembuahan. Ikan siap ovulasi atau spermiasi akan memberikan tanda-tanda seperti diam di pojok dengan mengibas-ngibaskan ekornya atau mulai saling mengejar antara induk jantan dan betina. Telur dikumpulkan dalam wadah dan diusahakan jangan sampai terkena air atau tetap kering sebelum dibuahi. Proses pembuahan didahului dengan penyiapan sperma yang dikeluarkan dari induk jantan. Sperma ditampung dalam wadah dan diencerkan dengan larutan NaCl. Penetasan merupakan peristiwa pada saat embrio ikan keluar dari telur menjadi larva dan pertama kalinya berhubungan dengan lingkungan sekitarnya. Telur yang telah dibuahi ditetaskan pada tempat yang telah disiapkan sebagai tempat penetasan telur. Telur ditebar merata di dasar akuarium dan jangan ada telur yang menumpuk, karena telur tersebut akan busuk dan menyebabkan menurunnya kualitas media atau air sehingga dapat mengakibatkan kegagalan penetasan. Larva ikan patin mempunyai sifat kanibal sehingga untuk menghindarinya perlu diperhatikan waktu untuk pemberian pakan. pakan pertama diberikan sekitar 24 jam setelah menetas pada kisaran suhu pemeliharaan 31°C. Pakan yang diberikan berupa Artemia. Pakan diberikan secara ad libitum atau secukupnya dengan memperhatikan nafsu makan ikan. pemberian pakan artemia dilakukan selama 3hari, setelah itu larva ikan diberikan pakan berupa cacing sutra (Sunarma, 2007).



4.1.2



Teknik Penetasan Artemia Artemia merupakan salah satu jenis pakan alami yang sangat diperlukan



dalam kegiatan pembenihan udang dan ikan. Hidup di perairan yang kadar garamnya tinggi sekali. Artemia akan menghasilkan kista yaitu telur yang diseliputi oleh selubung kuat untuk melindungi embrio dari perubahan lingkungan yang merugikan. Pada kadar garam yang tinggi, kista akan mengapung dan



28



mudah dikumpulkan, dibersihkan, dikeringkan selanjutnya dikalengkan dan dijual. Artemia akan digunakan sebagai makanan hidup, kista direndam dalam air laut dan akan menetas menjadi nauplius. Nauplius inilah yang digunakan untuk makanan larva udang atau ikan. Penetasan larva dapat dilakukan dengan cara persiapan alat, pembiakan Artemia dan penetasan Artemia. Berikut teknik penetasan Artemia : a. Persiapan Alat Disediakan wadah dari botol plastik dengan kapasitas 1,5 L dan dipotong bagian atas botol Digunakan larutan air asin dengan garam dengan berat sebanyak 30 gram, 30 gram, 30 gram, 60 gram dan 60 gram. Disiapkan bibit Artemia sebanyak 0,5 gram, 1 gram dan 1,5, 2 gram, dan 2,5 gram. Dimasukan air bersih pada botolsebanyak 1 liter untuk artemia 30 gram dan 2 liter untuk artemia 60 gram, lalu dipasang aerasi dengan volume aerasi besar. b. Penetasan Telur Telur yang sudah dibuahi dimasukan ke dalam wadah penetasan Setelah 24 jam dari pembuahan, terlihat adanya telur yang mulai menetas



c. Pemanenan Artemia yang telah menetas akan terlihat tertampung Artemia dipanen dan dapat diberikan sebagai pakan untuk larva ikan patin



29



4.1.3



Teknik Pemeliharaan Larva dan Benih Pemeliharaan larva dan benih ikan patin dilakukan pada akuarium di



dalam laboratorium. Larva ikan patin yang baru menetas masih lemah. Organ tubuhnya baru terbentuk dan belum sempurna. Inilah masa kritis bagi larva. Agar bisa hidup dengan baik, organ tubuhnya bisa sempurna, dan masa kritis maka larva itu harus dipelihara. Teknik pemeliharaan larva dan benih diberikan pakan artemia 2 jam sekali selama 36 jam, lalu 4 jam sekali (36 Jam). Setelah diberi pakan artemia lalu dilanjutkan dengan pemberian cacing sutra selama 7 hari. Aerasi ditempatkan pada setiap akuarium agar keperluan oksigen untuk benih dapat tercukupi. Cara menjaga kestabilan suhu ruangan dan suhu air digunakan heater dengan suhu berkisar 28ºC - 32ºC. Benih umur sehari belum perlu diberi makan tambahan dari luar karena masih mempunyai cadangan makanan berupa yolk sac atau kuning telur. Wadah pemeliharaan berupa akuarium yang berisi 10 liter air dilengkapi aerasi dan pengatur suhu (heater). Kepadatan benih patin perlu diperhatikan agar tidak stress. Keadaan lingkungan yang tidak baik menyebabkan ikan patin tidak dapat berkembang dengan baik. Kebersihan akuarium perlu dijaga dengan melakukan penyiponan. Ikan patin mudah stress sehingga harus diperhatikan dalam menjaga kualitas air.



30



BAB V PENUTUP



5.1



Kesimpulan Berdasarkan hasil pengamatan dapat disimpulkan bahwa induk ikan patin



betina yang dipilih untuk pemijahan buatan adalah yang memiliki perut lembek, membesar kea rah anus, urogenital membengkak dan berwarna merah tua. Induk jantan keluar sperma jika diurut. Untuk pemberian rangsangan dilakukan melalui pemberian hormon ovaprim. Penyuntikan dilakukan dua kali, penyuntikan pertama dilakukan untuk merangsang pematangan gonad dan penyuntikan kedua untuk merangsang ovulasi.



5.2



Saran Diharapkan dalam melakukan pemijahan buatan ikan patin menggunakan



hormon ovaprim dilakukan dengan teliti, hati-hati dan sesuai dengan prosedur. Perlu lebih teratur dalam pemberian pakan selama pemeliharaan benih ikan patin agar tidak terjadi kanibalisme.



31



DAFTAR PUSTAKA



Andiba, Astiraini. 2015. Maturasi Ikan Patin Siam Pangasianodon Hypophthalmus di Luar Musim Pemijahan Menggunakan Premiks Hormon Pregnant Mare Serum Gonadotrophin (PMSG) dan Antidopamin. Skripsi. Departemen Budidaya Perairan Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan Institut Pertanian Bogor, Bogor. Arie, Usni. 2000. Ikan Patin Andalan Indonesia. Dalam Warta Penelitian dan Pengembangan Pertanian. Volume 22 No 3. Arief, M., Mufidah, & Kusriningrum. (2008). Pengaruh Penambahan Probiotik Pada Pakan Buatan Terhadap Pertumbuhan dan Rasio Konversi Pakan Ikan Nila Gift (Oreochromis niloticus). Surabaya: Jurnal Ilmiah Berkala Perikanan, Program Studi Budidaya Perairan, Universitas Airlangga. Djariah, A.S. 2001. Budidaya Ikan Patin. Kanisius. Yogyakarta. 87 hal. Effendie, M. I. 1997. Biologi Perikanan. Yogyakarta: Yayasan Pustaka Nusatama. Gusrina, 2008. Budidaya Ikan Jilid I. Direktorat Pembinaan Sekolah Menengah Kejuruan. PT. Macaan Jaya Cemerlang. Klaten. Jusadi, D. 2015. Kombinasi Cacing Tubifex dan Pakan Buatan Pada Larva Ikan Patin. Jurnal Akuakultur Indonesia. Institut Pertanian Bogor. Khairuman. 2007. Budidaya Patin Super. Agromedia Pustaka. Jakarta 134 hal. Kordi, K.M.G.H. 2005. Budidaya Ikan Patin, Biologi, Pembenihan dan Pembesaran. Yayasan Pustaka Nusantara. Yogyakarta. NRC,N. R. (1983). Nutrient Requirements of Warmwater Fishes dan Shellfish. Washington DC: National Academy of Sciences. Pitoyo, 2004. Artemia salina(kegunaan, Biologi dan Kulturnya). INFIS Manual Seri No.12. Direktorat Jendral Perikanan dan International Development Research Centre. Saanin, H. 1968. Taksonomi dan Kunci Identifikasi Ikan. PT Bina Cipta, Bandung. Subyakto, S. dan S. Cahyaningsih. 2003. Pembenihan Skala Rumah Tangga. PT Agromedia Pustaka, Depok.



32



Sunarma, Ade. 2007. Panduan Singkat Teknik Pembenihan Ikan Patin (Pangasius hypopthalmus). BBPAT Sukabumi, Sukabumi. Susanto, H dan Amri, K. 2002. Budidaya Ikan Patin. Penebar Swadaya. Jakarta. Susanto, H. 2006. Budidaya Ikan di Pekarangan (Edisi Revisi). Penebar Swadaya. Jakarta. Tahapari, Evi., dan Raden Roro Sri Pudji Sinarni Dewi. 2013. Peningkatan Performa Reproduksi Ikan Patin Siam (Pangasianodon Hypophthalmus) pada Musim Kemarau Melalui Induksi Hormonal. Berita Biologi 12 (2) . Zairin MJr. 2003. Endokrinologi dan perannya bagi masa depan perikanan Indonesia. Orasi ilmiah Guru Besar Tetap Ilmu Fisiologi Reproduksi dan Endokrinologi Hewan Air, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, Institut Pertanian Bogor; 13 September 2003; Bogor, Indonedia. (ID). hal 11-12.



33



LAMPIRAN Lampiran 1. Dokumentasi Praktikum



Seleksi induk



Pengambilan induk



Penyuntikan



Persiapan wadah larva



Larva patin



Pengecekan suhu



34



Persiapan kultur artemia



Kultur artemia



Artemia setelelah di kultur



Pemberian pakan artemia pada larva



35



Lampiran 2. Tahapan Praktikum a. Seleksi Induk Disurutkan air kolam sampai 30% untuk mempermudah pengambilan induk



Dilakukan penjaringan induk dengan plastic bag



Diperiksa kelengkapan organ tubuh dan kesehatan induk yang terjaring



Dipindahkan induk ke kolam induk untuk proses pemberokan b. Pengecekan Kematangan Gonad Induk Patin Diseleksi induk



Dimasukkannya indukan patin ke dalam kolam inkubasi



Diberok selama 8-12 jam c. Penyuntikan Disuntik ikan yang telah diberok selama 8 jam dengan hormon HCG (penyuntikan pertama)



Disuntik ikan setelah 24-26 jam setelah penyuntikan pertama dengan hormon ovaprim



Dimasukkan kembali indukan ke dalam kolam inkubasi



36



d. Stripping Diambil induk yang telah siap memijah



Diangkat dan dikeringkan terlebih dahulu indukan dengan handuk



Diangkat dan dikeringkan terlebih dahulu indukan dengan handuk



Dilakkan proses stripping



Dimasukkan sperma yang telah distripping lebih dulu ke dalam telur dan diaduk dengan menggunakan bulu ayam sampai sperma dan telur tercampur merata



Ditambahkan NaCl sambil diaduk kemudian ditambahkan air bersih sedikit demi sedikit sambil diaduk selama 1-2 menit



Dibuang air dan telur dicuci 2-3 kali dengan menggunakan air bersih . Ditambahkan air tawar dengan cepat untuk mengaktifkan spermatozoa



Dilakukan pencucian dengan menggunakan tanah liat



Diaduk 1-2 menit kemudian telur disaring dan dicuci kembali sampai bersih e. Penetasan Telur Dicuci bersih telur yang telah terbuahi kemudian dimasukkan ke dalam wadah penetasan. Masing- masing diisi sebanyak 300 ml



37



Dilihat telur yang menetas setelah 18 jam dari pembuahan f. Pemeliharaan Larva Ditebar larva dengan padat tebar minimal yaitu 15 ekor/liter dan maksimal yaitu 40 ekor/liter



Dilakukan pemberian pakan dilakukan setelah 36 jam dari penetasan



Diberikan pakan tambahan yang diberikan pertama kali kepada larva adalah artemia selama 7 hari



Diberikan pakan cacing sutera (cacing tubifex) setalah benih berumur 7 hari



Dilakukan pemberian pakan buatan atau pellet setelah umur benih berumur >14 hari