Prosedur VFA [PDF]

Citation preview

LAPORAN AKHIR PRAKTIKUM PAKAN DAN NUTRISI RUMINANSIA IN VITRO



Oleh : KELOMPOK 24



LABORATORIUM ILMU NUTRISI MAKANAN TERNAK FAKULTAS PETERNAKAN UNIVERSITAS JENDERAL SOEDIRMAN PURWOKERTO 2018



i



LAPORAN AKHIR PRAKTIKUM PAKAN DAN NUTRISI RUMINANSIA IN VITRO



Oleh : KELOMPOK 24 Anggota : 1. Sofi Khoirunnisa



(D1A016028)



2. Hanan Fathinah Nur Azizah (D1A016041) 3. Ai Inayatul Hasanah



(D1A016076)



4. Fadillah Yoga Widiyanto



(D1A016108)



5. Dimas Adi Saputra



(D1A016175)



6. Umi Sarifah



(D1A016133)



7. Reza Fauziyah



(D1A016151)



8. Ratna Ayu Wardani



(D1A016237)



9. Adi Jaya Saputra



(D1A016010)



10. Dita Arum Anggraeni



(D1B018007)



LABORATORIUM ILMU NUTRISI MAKANAN TERNAK FAKULTAS PETERNAKAN UNIVERSITAS JENDERAL SOEDIRMAN PURWOKERTO 2018



ii



LAPORAN AKHIR PRAKTIKUM PAKAN DAN NUTRISI RUMINANSIA IN VITRO



Oleh : 1. Sofi Khoirunnisa



(D1A016028)



2. Hanan Fathinah Nur Azizah (D1A016041) 3. Ai Inayatul Hasanah



(D1A016076)



4. Fadillah Yoga Widiyanto



(D1A016108)



5. Dimas Adi Saputra



(D1A016175)



6. Umi Sarifah



(D1A016133)



7. Reza Fauziyah



(D1A016151)



8. Ratna Ayu Wardani



(D1A016237)



9. Adi Jaya Saputra



(D1A016010)



10. Dita Arum Anggraeni



(D1B018007)



Diterima dan disetujui Pada tanggal………………… Koordinator



Asisten Pendamping



Pakan dan Nutrisi Ruminansia



Pakan dan Nutrisi Ruminansia



HENDRIK PUTRA WAHYU P D1A015046



TITI WIDYA NINGRUM D1A015192



Koordinator Umum



ASEP AZIZ RAHMATULLOH D1A015175



iii



KATA PENGANTAR Puji syukur kehadirat Allah SWT karena atas rahmat dan hidayah-Nya penulis dapat menyelesaikan Laporan Akhir Praktikum mata kuliah Pakan dan Nutrisi Ruminansia. Laporan Akhir Praktikum mata kuliah Pakan dan Nutrisi Ruminansia ini dibuat guna memenuhi persyaratan salah satu syarat kurikuler pada praktikum mata kuliah Pakan dan Nutrisi Ruminansia di Fakultas Peternakan Universitas Jenderal Soedirman. Penulis menyadari bahwa dalam penyusunan laporan ini tidak lepas dari bantuan dan dukungan berbagai pihak. Oleh karena itu pada kesempatan kali ini penulis ingin menyampaikan terimakasih kepada : 1. Seluruh staf dosen mata kuliah Pakan dan Nutrisi Ruminansia, Fakultas Peternakan Universitas Jenderal Soedirman, Purwokerto. 2. Seluruh asisten yang telah membimbing dan mengarahkan penulis dalam praktikum dan penyusunan laporan ini. 3. Semua pihak yang telah membantu penyusunan laporan ini yang tidak dapat penulis sebutkan satu per satu. Penulis menyadari bahwa penyusunan laporan ini jauh dari sempurna. Oleh karena itu penulis mengharapkan kritik dan saran yang membangun dari semua pihak untuk pengembangan penulisan selanjutnya dan demi sempurnanya laporan ini. Penulis berharap semoga laporan ini bermanfaat khususnya bagi penulis dan umumnya bagi pembaca. Purwokerto, Desember 2018



Penulis



iv



DAFTAR ISI COVER ................................................................................................................... i LEMBAR PENGESAHAN ................................................................................. iii KATA PENGANTAR .......................................................................................... iv DAFTAR ISI .......................................................................................................... v DAFTAR TABEL ............................................................................................... vii I. PENDAHULUAN .............................................................................................. 1 1.1 Latar Belakang .................................................................................................. 1 1.2 Tujuan................................................................................................................ 2 1.3 Waktu dan Tempat ............................................................................................ 2 II. TINJAUAN PUSTAKA ................................................................................... 3 2.1 Percobaan Kecernaan Bahan Kering (KBK) dan Kecernaan Bahan Organik (KBO) 3 2.2 Teknik Pengukuran Gas In Vitro (Gas Test) ..................................................... 4 2.3 Pengukuran Konsentrasi VFA Total (Volatil Fatty Acids) ............................... 5 2.4 Pengukuran Nitrogen Amonia (N-NH3) ........................................................... 6 III. MATERI DAN CARA KERJA .................................................................... 7 3.1 Materi ................................................................................................................ 7 3.1.1 Alat ................................................................................................................. 7 3.1.1.1 Pengukuran Kecernaan Bahan Kering (KBK) dan Kecernaan Bahan Organik (KBO)........................................................................................................ 7 3.1.1.2 Teknik Pengukuran Gas In Vitro (Gas Test) .............................................. 7 3.1.1.3 Pengukuran Konsentrasi VFA Total (Volatil Fatty Acid) .......................... 7 3.1.1.4 Pengukuran Nitrogen-Amonia (N-NH3)..................................................... 8 3.1.2 Bahan ............................................................................................................. 8 3.1.2.1 Pengukuran Kecernaan Bahan Kering (KBK) dan Kecernaan Bahan Organik (KBO)........................................................................................................ 8 3.1.2.2 Teknik Pengukuran Gas In Vitro (Gas Test) .............................................. 8 3.1.2.3 Pengukuran Konsentrasi VFA Total (Volatil Fatty Acid) .......................... 8 3.1.2.4 Pengukuran Nitrogen-Amonia (N-NH3)..................................................... 8 3.2 Cara Kerja ......................................................................................................... 9 3.2.1 Pengukuran Kecernaan Bahan Kering (KBK) dan Kecernaan Bahan Organik (KBO)...................................................................................................................... 9 3.2.2 Teknik Pengukuran Gas In Vitro (Gas Test)................................................ 10 3.2.3. Pengukuran Konsentrasi VFA Total (Volatil Fatty Acids) ......................... 11 IV. HASIL DAN PEMBAHASAN .................................................................... 13



v



4.1 Hasil ................................................................................................................ 13 4.1.1 Pengukuran Kecernaan Bahan Kering (KBK) dan Bahan Organik (KBO) . 13 4.1.2 Hasil Teknik Pengukuran Gas In Vitro (Gas Test) ...................................... 14 4.1.3 Pengukuran Konsentrasi VFA Total (Volatile Fatty Acids) ........................ 16 4.1.4 Pengukuraan Nitrogen-Amonia (N-NH3) .................................................... 16 4.2 Pembahasan ..................................................................................................... 17 4.2.1 Pengukuran Kecernaan Bahan Kering (KBK) dan Bahan Organik (KBO) . 17 4.2.2 Teknik Pengukuran Gas In Vitro (Gas Test)............................................... 19 4.2.3 Pengukuran Konsentrasi VFA Total (Volatil Fatty Acid) ........................... 22 4.2.4. Pengukuran Nitrogen- Amonia (N-NH3).................................................... 24 V. PENUTUP ....................................................................................................... 26 5.1 Kesimpulan ..................................................................................................... 26 5.2 saran. ............................................................................................................... 26 DAFTAR PUSTAKA .......................................................................................... 27



vi



DAFTAR TABEL Tabel 1. Hasil Gas Test…………………………………………………………15 Tabel 2. Hasil VFA……………………………………………………………..16 Tabel 3. Hasil N-NH3…………………………………………………………..16



vii



I. PENDAHULUAN 1.1 Latar Belakang Ternak ruminansia bergantung pada bahan-bahan pakan yang berkadar serat tinggi. Kemampuannya yang unik memiliki sifat pencernaan yaitu ruminasi yang menggambarkan adanya proses fisiologis pencernaan yang spesifik serta menyajikan metabolit sebagai produk-produk akhir pencernaan, yang disebabkan oleh adanya mikroba didalam rumen. Teknik in vitro pada prinsipnya adalah meniru proses pencernaan dalam rumen. Teknik in vitro mempunyai keuntungan dibanding in vivo karena dapat menghemat biaya, waktu dan tenaga. Teknik in vitro dapat digunakan untuk penelitian terhadap beberapa masalah diantaranya mengukur hilangnya bahan kering dan bahan organik (metode Tilley and Terry), VFA, dan gas produksi gas N-NH3 yang digunakan sebagai parameter in vivo. Percobaan in vitro mendekati kesamaaan pada pengukuran sebenarnya. Teknik in vitro pada prinsipnya adalah meniru proses pencernaan dalam rumen. Saluran pencernaan ruminansia berbeda dengan saluran pecernaan non ruminansia. Perbedaan ini terlihat pada proses pencernaan di dalam lambung, karena lambung ruminansia terdiri dari 4 bagian dan yang bekerja adalah enzim yang dihasilkan oleh mikroorganisme (bakteri, protozoa, dan fungi). Proses pencernaan yang terjadi di dalam tubuh makhluk hidup disebut dengan in vivo. Percobaan fermentasi secara in vitro dapat digunakan untuk mengevaluasi kecernaan karbohidrat (serat kasar, selulosa, energi) dan protein. Pencernaan pakan merupakan suatu rangkaian proses yang terjadi pada pakan selama di dalam saluran pencernaan sampai memungkinkan terjadinya suatu penyerapan.



1



Kecernaan suatu pakan dapat ditentukan berdasarkan jumlah nutrient yang terdapat dalam pakan dan yang dapat dicerna serta dapat diketahui bila pakan telah mengalami proses pencernaan. Secara umum pakan yang berkualitas baik akan menmpunyai tingkat konsumsi yang lebih tinggi dibandingkan dengan pakan yang berkualitas rendah. Hal tersebut disebabkan pakan berkualitas akan mudah dicerna baik secara fermentatif maupun hidrolitis. Protein yang larut dalam pepsin dapat dilakukan 2 tahap dari bahan pakan atau ransum ruminansia, selain itu dapat juga untuk mengukur konsentrasi VFA, N-NH3 dan gas yang terbentuk. Hal yang perlu dipahami dan sering menimbulkan kerancuan adalah metode pengukuran kecernaan protein secara in vitro tidak sama dengan mengukur kelarutan protein dalam pepsin secara in vitro. 1.2 Tujuan 1.



Mengevaluasi kualitas bahan pakan ternak ruminansia berdasarkan nilai hilangnya atau Kecernaan Bahan Kering dan Kecernaan Bahan Organik, serta konsentrasi VFA dan N-NH3 secara in vitro.



2.



Mengukur produksi total gas CO2 dan CH4, hasil fermentasi oleh mikroba rumen dari bahan pakan atau ransum yang diuji.



1.3 Waktu dan Tempat Praktikum In vitro yang terdiri dari mengukur Kecernaan Bahan Kering (KBK) dan Kecernaan Bahan Organik (KBO), mengukur kosentrasi VFA, mengukur kosentrasi N-NH3, dan pengukuran gas In vitro yang dilaksanakan pada Senin – Jum’at, 26-30 November 2018, bertempat di Laboratorium Ilmu Nutrisi dan Makanan Ternak (INMT) Fakultas Peternakan Universitas Jenderal Soedirman Purwokerto.



2



II. TINJAUAN PUSTAKA 2.1 Percobaan Kecernaan Bahan Kering (KBK) dan Kecernaan Bahan Organik (KBO) Kecernaan dapat dijadikan salah satu indikator dalam menentukan kualitas ransum. Persentase kecernaan bahan kering maupun bahan organik yang dihasilkan menunjukkan seberapa besar nutrien dalam pakan dapat dimanfaatkan oleh mikroba dalam rumen (Sutardi,1977). Pengukuran kecernaan bahan organik dilakukan karena peran bahan organik dalam memenuhi kebutuhan ternak untuk hidup pokok maupun produksi. Kecernaan ransum berkaitan dengan komposisi nutrisi dari ransum, terutama kandungan serat kasar. Peningkatan kandungan serat kasar dapat menurunkan jumlah bahan organik yang dapat dicerna karena penurunan aktivitas mikroba rumen. Proses pencernaan bahan kering sangat membutuhkan protein pakan sebagai sumber nutrien esensial bagi ternak dan ketersediaannya yang cukup dapat meningkatkan pertumbuhan dan aktivitas mikroba, sehingga proses pencernaan meningkat. Pertumbuhan dan aktivitas mikroba selulolitik sangat membutuhkan sumber energi, nitrogen, mineral dan vitamin. Sumber protein yang berasal dari pakan sebagian dihidrolisis menjadi peptida dan asam amino oleh mikroba rumen. Sebagian asam amino mengalami degradasi menjadi asam organik, ammonia dan karbon dioksida. Pencernaan protein di dalam rumen dilakukan oleh mikroba rumen yang berpengaruh terhadap kecernaan bahan kering pakan (Santoso,2017). Menurut Nurhayati (2008), dengan adanya penambahan SPM dalam ransum komplit cenderung dapat meningkatkan kecernaan bahan kering maupun bahan organik bahan karena peningkatan kandungan pati maupun protein dalam ransum komplit. Kecernaan bahan organik menggambarkan ketersediaan nutrien pakan. Kecernaan bahan kering dan kecernaan bahan organik mempunyai hubungan yang erat karena nutrien yang terkandung di dalam bahan organik, terkandung pula dalam bahan kering. Kecernaan bahan kering dan kecernaan bahan organik mempunyai hubungan yang erat karena nutrien yang terkandung di dalam bahan organik, terkandung pula dalam bahan kering. Kecernaan bahan organik tersebut tidak jauh berbeda dengan kecernaan bahan kering, karena kecernaan bahan 3



organik erat hubungannya dengan kecernaan bahan kering. Ranjhan (1981) menyatakan bahwa bahan pakan yang kadar nutriennya sama memungkinkan kecernaan bahan organik mengikuti kecernaan bahan keringnya. 2.2 Teknik Pengukuran Gas In Vitro (Gas Test) Salah satu penyebab rendahnya produktivitas ternak ruminansia di negara tropis seperti Indonesia adalah kurang memadainya kuantitas maupun kualitas pakan yang diberikan. Dedaunan yang berasal dari pohon merupakan salah satu alternatif yang dapat dijadikan sumber hijauan makanan ternak (HMT), khususnya di musim kemarau pada saat produksi HMT konvensional dari jenis rerumputan dan leguminosa rendah. Namun demikian kebanyakan dedaunan tersebut mengandung senyawa fenolik dalam konsentrasi yang tinggi, khususnya dalam bentuk senyawa tanin (Makkar & Becker, 1998). Tanin merupakan salah satu senyawa metabolit sekunder yang terdapat pada tanaman dan disintesis oleh tanaman. Tanin tergolong senyawa polifenol dengan karakteristiknya yang dapat membentuk senyawa kompleks dengan makromolekul lainnya. Sejak tahun 1950 telah banyak dikembangkan teknik in-vitro dengan simulasi sistem yang ada di dalam rumen, baik dari sistem yang sederhana dalam batch culture maupun dengan sistem yang lebih komplek dalam sistem continuous culture. Teknik in-vitro produksi gas merupakan teknik yang sederhana dan banyak digunakan dalam penelitian fermentasi rumen meskipun teknik in-vivo dibutuhkan pula pada akhirnya. Umumnya digunakan dalam tahap awal penelitian secara in-vitro untuk prediksi nilai kecernaan pakan dalam rumen dan prediksi nilai nutrisi pakan. Terdapat keterkaitan antara proses fermentasi di dalam rumen dengan produksi gas. Namun pengukuran secara langsung pada ternak sangat sulit dilakukan dan tidak mudah untuk diulang. Menke et al (1979) menyebutkan bahwa terdapat korelasi yang nyata antara produksi gas secara in-vitro dengan produksi gas secara in-vivo. Produksi gas in-vitro merupakan simulasi rumen dalam sistem bacth culture. Sampel pakan yang akan diteliti di inkubasi dalam fermentor (syringe glass atau botol serum) pada suhu 390C dalam medium anaerob yang diinokulasi dengan mikroba rumen. Adanya aktifitas fermentasi oleh mikrobia rumen akan menghasilkan gas. Gas yang terbentuk berasal dari hasil fermentasi (CO2 dan



4



CH4) dan secara tidak langsung dari CO2 yang dilepaskan dari buffer bikarbonat setiap dihasilkan volatyl fatty acid (VFA). Volume gas yang terbentuk dapat digunakan sebagai indikasi proses fermentasi yang terjadi. Korelasi yang sangat signifikan antara kecernaan bahan organik dan produksi VFA dengan produksi gas (Beuvink et al, 1992). 2.3 Pengukuran Konsentrasi VFA Total (Volatil Fatty Acids) Cairan rumen disaring dengan menggunakan kain puring untuk memisahkan antara supernatan dan endapan. Bagian supernatan dilakukan analisis pH cairan rumen, NH3, jumlah bakteri, dan VFA. Bagian residu untuk menganalisis KCBK dan KCBO (Fathul dan Wajizah, 2009). Analisis VFA dengan cara mendestilasi supernatan hasil fermentasi, kemudian terjadi kondensasi dan ditampung ke dalam gelas Erlenmeyer yang berisi 5 ml 0,5 N NaOH sampai menjadi 300 ml. Kemudian, menambahkan 2-3 tetes indikator fenolftalin dan dilanjutkan titrasi menggunakan larutan 0,5 N HCl sampai terjadi perubahan warna dari merah jambu menjadi tidak berwarna (Muhtarudin, 2007). Menghitung konsentrasi VFA berdasarkan rumus: konsentrasi VFA (mM) = (a-b) x N HCl x 1000/5; a = ml HCl yang diutuhkan untuk titrasi blanko (5 ml Na OH); b = ml HCl yang dibutuhkan untuk titrasi hasil destilasi ransum perlakuan; N = normalitas larutan HCl (Fathul dan Wajizah, 2009). Terjadinya peningkatan produk VFA disebabkan oleh terjadinya peningkatan populasi mikroba rumen karena VFA tersebut hasil dari aktivitas mikroba rumen yang telah melakukan fermentasi (Soepranianondo, 2008) Kandungan VFA akan meningkat seiring dengan meningkatnya protein pakan dan sumber NPN. Meningkatnya rasio antara VFA dan NH3 mengindikasikan adanya pertambahan bobot hidup (PBH) (Prayuwidayati dan Widodo, 2007). Kandungan VFA lebih tinggi bila terdapat populasi protozoa dibandingkan dengan rumen didefaunasi secara total (Herdian et al, 2011). Konsentrasi VFA total media rumen berkisar 60–120 mM. Tingginya produksi VFA yang diikuti dengan rendahnya konsentrasi merupakan cerminan efisiensi penggunaan amonia oleh bakteri untuk sintesis protein mikroba dan pertumbuhan. Selanjutnya bakteri tersebut akan mencerna pakan untuk



5



memproduksi VFA yang akan digunakan sebagai sumber energi untuk induk semang dan sumber karbon untuk bakteri itu sendiri (Syahrir et al, 2009). 2.4 Pengukuran Nitrogen Amonia (N-NH3) Amoniak sebagai hasil biofermentasi protein di dalam rumen, akan digunakan untuk membentuk protein mikroba. Kadar amoniak dalam cairan rumen merupakan petunjuk adanya proses degradasi (perombakan) protein yang masuk dalam rumen dan proses sintesis protein oleh mikroba rumen. Protein yang masuk ke dalam rumen, sebagian akan mengalami perombakan oleh enzim proteolitik yang dikandungan oleh mikroba rumen (Muhtarudin, 2007). Sebagian besar mikroba rumen menggunakan amonia untuk prolifi kasi diri, terutama dalam proses sintesis tubuhnya. Dinamika konsentrasi amonia dalam cairan rumen menggambarkan efektivitas proses fermentasi. Konsentrasi amonia cairan rumen fermentasi setiap perlakuan yang diukur pada 4 jam setelah proses fermentasi berlangsung (Syahrir et al, 2009). Pengukuran NH3 dengan cara supernatan dan Na2CO3 (terpisah) dimasukkan ke bagian tepi dalam cawan Conway; dan bagian tengah lingkaran cawan Conway diisi asam borat. Cawan Conway ditutup rapat dan diinkubasi selama 24 jam. Bagian tengah lingkaran cawan Conway dititrasi dengan 0,00143 N H2SO4 sampai warna kembali ke warna asal asam borat (Fathul dan Wajizah, 2009). Perhitungan kadar NH3 dengan menggunakan rumus: kadar NH3 (mM) = (ml H2SO4 x n H2SO4 x 1000) mM (Fathul dan Wajizah, 2009). Soepranianondo (2005) menyatakan bahwa kandungan protein yang meningkat dalam ransum akan meningkatkan kandungan NH3 rumen karena 60% protein pakan akan diubah menjadi amonia N, sedangkan 40% akan diteruskan ke abomasum dan usus halus untuk dicerna dan diabsorbsi dan sebagian lagi dibuang ke feses. Kandungan NH3 rumen merupakan pencerminan dari aktivitas degradasi protein pakan dan endogenous protein oleh mikrobia rumen melalui mekanisme keseimbangan N dari tubuh ternak (Herdian et al, 2011). Konsentrasi amonia yang rendah dalam cairan rumen dapat mencerminkan proses fermentasi yang berjalan baik. Amonia dimanfaatkan dengan baik, protein ransum sulit terdegradasi atau kandungan protein ransum rendah (Syahrir et al, 2009).



6



III. MATERI DAN CARA KERJA 3.1 Materi 3.1.1 Alat 3.1.1.1 Pengukuran Kecernaan Bahan Kering (KBK) dan Kecernaan Bahan Organik (KBO) 1. Erlenmeyer



6. Kertas saring biasa



2. Shaker waterbath



7. Kertas saring whatman 41



3. Tutup berpentil



8. Kompor



4. Timbangan analitik



9. Dispenser



5. Tanur



10. Tabung oksigen



3.1.1.2 Teknik Pengukuran Gas In Vitro (Gas Test) 1. Piston



5. Spatula



2. Tabung Menkey



6. Dispenser



3. Timbangan analitik



7. Penjepit



4. Oven 3.1.1.3 Pengukuran Konsentrasi VFA Total (Volatil Fatty Acid) 1. Destilator 2. Erlenmeyer 3. Pipet tetes 4. Buret



7



3.1.1.4 Pengukuran Nitrogen-Amonia (N-NH3) 1. Cawan Conway 2. Pipet 1 ml 3. Oven 4. Buret 3.1.2 Bahan 3.1.2.1 Pengukuran Kecernaan Bahan Kering (KBK) dan Kecernaan Bahan Organik (KBO) 1. Larutan Mc. Dougalls 24 ml 2. Cairan rumen 16 ml 3. HgCl2 jenuh 4. Pepsin HCl 0,3 % 3.1.2.2 Teknik Pengukuran Gas In Vitro (Gas Test) 1. Sampel 0,2 gram 2. Larutan medium 20 ml 3. Cairan rumen 10 ml 4. Vaselin putih 3.1.2.3 Pengukuran Konsentrasi VFA Total (Volatil Fatty Acid) 1. Supernatan 5 ml



4. NaOH 0,5 N



2. H2SO4 15 % 1 ml



5. Indikator PP 2 tetes



3. Akuades secukupnya



6. HCl 0,5 N



3.1.2.4 Pengukuran Nitrogen-Amonia (N-NH3) 1. Asam borat berindikator 1 ml 2. Supernatan 1 ml



8



3. Na2CO3 jenuh1 ml 4. H2SO4 0,01 N 5. Vaselin hijau 3.2 Cara Kerja 3.2.1 Pengukuran Kecernaan Bahan Kering (KBK) dan Kecernaan Bahan Organik (KBO) Pencernaan Fermentatif 2 gram sampel dimasukkan ke dalam erlenmeyer.



Ditambahnkan 24 ml larutan Mc. Dougalls.



Diinkubasi selama 15 menit.



Ditambahkan 16 ml cairan rumen, ditutup dengan tutup berpentil, diisolasi.



Diinkubasi selama 24 jam di shaker waterbath secara anaerob dengan kecepatan 60-70 rpm pada suhu 39℃.



Dialiri CO2 setiap 4 jam sekali.



Ditambahkan HgCl2 jenuh sebanyak 1 tetes.



Dipisahkan residu dan supernatan menggunakan kertas saring biasa.



9



Residu hasil pencernaan fermentatif ditambahkan 40 ml HCl 0,3 % Pencernaan Hidrolitis Diinkubasi selama 24 jam secara aerob pada suhu 38-39 ℃



Disaring menggunakan kertas saring whatman 41.



Residu dikeringkan di oven pada suhu 105℃ selama 8 jam.



Dicatat berat BK (Bahan Kering).



Ditanur pada suhu 600℃ selama 4-6 jam.



Dioven



Didesikator



Catat Bahan Organik (BO)



3.2.2 Teknik Pengukuran Gas In Vitro (Gas Test) Ditimbang sampel sebanyak 0,2 gram.



Diolesi piston dengan vaselin putih.



Dimasukkan sampel ke dalam tabung menkey.



Diinkubasi selama 10-15 menit. Ditambahkan 20 ml larutan medium dan 10 ml cairan rumen. 10



Diatur skala awal pada piston.



Diinkubasi pada suhu 38-39℃.



Dioven selama 24 jam.



Diamati pertambahan gas setiap 4 jam sekali.



3.2.3. Pengukuran Konsentrasi VFA Total (Volatil Fatty Acids)



Destilator dididihkan.



Ditambahkan 5 ml supernatan, 1 ml H2SO4 15 %, dan akuades secukupnya.



Ditampung hasil destilat pada erlenmeyer yang berisi NaOH 0,5 N, sampai volume 100 ml.



Ditambahkan indikator PP 2 tetes.



Dititrasi dengan HCl 0,5 N sampai jernih.



Dibaca skala titrasi. Cawan conway diolesi dengan vaselin hijau.



Bagian tengan, ditambahkan 1 ml asam borat berindikator. Bagian kanan, ditambahkan 1 ml supernatan. Bagian kiri, ditambahkan 1 ml Na2CO3.



11



Ditutup cawan secara perlahan dari samping. Diputar angka 8 agar homogen.



Diinkubasi selama 24 jam pada suhu ruang.



Dititrasi dengan H2SO4 0,01 N.



12



IV. HASIL DAN PEMBAHASAN 4.1 Hasil 4.1.1 Pengukuran Kecernaan Bahan Kering (KBK) dan Bahan Organik (KBO) Sampel = 85% Rumput Raja : 15% Indigofera= 85% Rumput Raja



= 1,8604 gr



15% Indigofera



= 0,3115 gr



Berat sampel



= 2,1719 gr



Berat kertas saring



= 1,0541 gr



Berat cawan



= 40,0114 gr



Berat setelah di oven = 42,2346 gr Berat setelah di tanur = 40,2219 gr Perhitungan : BK Residu



= Brt set. dioven - Brt cawan - Brt k. saring - BK residu blanko = 42,2346 gr - 40,0114 gr - 1,0541 gr – 0,0502 gr = 1,1189 gr



KBK (%)



=( =(



𝐵𝑟𝑡 𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙 𝑎𝑤𝑎𝑙−𝐵𝐾 𝑟𝑒𝑠𝑖𝑑𝑢 𝐵𝑟𝑡 𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙 𝑎𝑤𝑎𝑙 2,1719 𝑔𝑟 − 1,1189 𝑔𝑟 2,1719 𝑔𝑟



) 𝑥 100



) 𝑥 100



= 48,4829% Berat Abu



= Brt set. ditanur – Brt cawan – blanko = 40,2219 gr - 40,0114 gr – 0,0201 = 0,1703 gr



K Abu (%)



𝐵𝑒𝑟𝑎𝑡 𝐴𝑏𝑢



= 𝐵𝑒𝑟𝑎𝑡 𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙 𝑥 100



13



=



0,01703 𝑔𝑟 2,1719 𝑔𝑟



𝑥 100



= 7,8411 gr BO



= 100 – Kadar Abu = 100 - 7,8411 gr = 92,1589 gr



BO sampel (%)



=( =(



% 𝑝𝑒𝑟𝑏.𝐵𝑃1 𝑋 𝐵𝑂 𝑅.𝑅 100



)+(



% 𝑝𝑒𝑟𝑏.𝐵𝑃2 𝑋 𝐵𝑂 𝐼𝑛𝑑𝑖𝑔𝑜𝑓𝑒𝑟𝑎 100



85% 𝑋 84,41%



15% 𝑋 91,84%



100



100



)+(



)



)



= 71,7485 + 13,776 = 85,5245% Berat Abu Residu



=( =(



𝐵𝐾 𝑟𝑒𝑠𝑖𝑑𝑢 𝑋 𝐾𝑎𝑑𝑎𝑟 𝐴𝑏𝑢 100 1,1189 𝑔𝑟 𝑋 7,8411 𝑔𝑟 100



)



)



= 0,0877 gr BO Residu



= BK Residu – Berat abu residu = 1,1189 – 0,0877 = 1,0312 gr



BO Sampel Awal



=( =(



Brt.Sampel awal x BO sampel 100 2,1719 gr x 85,5245 100



)



)



= 1,8575 gr KBO (%)



=( =(



BO Sampel awal x BO residu 𝐵𝑂 𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙 𝑎𝑤𝑎𝑙



) x 100



1,8575 gr x 1,0312 gr 1,8575 𝑔𝑟



) x 100



= 44,4945% 4.1.2 Hasil Teknik Pengukuran Gas In Vitro (Gas Test) Sampel = 85% Rumput Raja : 15% Indigofera



14



85% Rumput Raja



= 0,1883 gr



15% Indigofera



= 0,0332 gr



Berat sampel



= 0,2215 gr



Table 1. Hasil Perubahan Gas Test k.19



k.20



k.21



k.22



k.23



k.24



Blanko1 Blanko 2



06.30



30



30



30



30



30



30



30



30



10.30



39



41



41



36



37



37,5



37,5



37



14.30



43



45



47



38



41



39



39



38



18.30



43,5



47



49



40



46



41



39



38



22.30



43,5



48



51



41,5



50



42,5



38,5



38



02.30



44



47



52



42,5



52,5



44



37



37



06.30



47



50



57



46



50,5



47



37



37



Perhitungan : (𝑉24−𝑉0−𝐺𝑏0) 𝑥 200 𝑥



𝐹𝐻+𝐹𝐶 2



Gb



=



W



= 100 𝑥 𝑏𝑒𝑟𝑎𝑡 𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙



𝑊 𝐵𝐾



= 0,2215 x 1000 = 221,5 mg Gb0



= 1,42



FH



=1



FC



=1



Gb



= =



(47−30−1,42) 𝑥 200 𝑥



1+1 2



221,5 15,58 𝑥 200 𝑥 1 100



15



= 14,067 mM 4.1.3 Pengukuran Konsentrasi VFA Total (Volatile Fatty Acids) Tabel 2. Hasil Perhitungan VFA Kelompok



ml titran HCl 0,5N



VFA (mM)



19



3,4



136



20



3,06



170



21



2,86



190



22



6,42



166



23



3,34



142



24



2,98



178



Blanko



4,76



Perhitungan : VFA



= (ml titran blanko – ml titran sampel ) x N HCl x



1000 5



= (4,76 ml – 2,98 ml) x 0,5 x 200 = 178 mM (kelebihan) 4.1.4 Pengukuraan Nitrogen-Amonia (N-NH3) Table 3. Hasil Perhitungan N-NH3 Kelompok



ml titran H2SO4 0,01N



N-NH3 (mM)



19



0,82



8,2



20



1,16



11,6



21



1,3



13



16



22



1,28



12,8



23



1,12



11,2



24



1,26



12,6



Perhitungan : N-NH3



= (ml titran x NH2SO4) x



1000 1



= (1,26 ml x 0,01) x 1000 = 12,6 mM (normal) 4.2 Pembahasan 4.2.1 Pengukuran Kecernaan Bahan Kering (KBK) dan Bahan Organik (KBO) Prinsip dari KBK dan KBO adalah mengukur kecernaan dengan anggapan bahwa pencernaan telah berjalan dengan sempurna selama 24 jam pencernaan fermentatif dan 24 jam pencernaan hidrolitis.



Metode yang digunakan yaitu



Tilley dan Terry 1963. Hal ini sesuai dengan pernyataan Harahap et al. (2017) yang menyatakan bahwa teknik in-vitro dilakukan dengan kondisi rumen yang sebenarnya.



Percobaan ini dilakukan berdasarkan metode Tilley dan Terry



(1963). Teknik ini menggunakan rumen tiruan yang berupa tabung fermentator 100 ml, larutan MC Dougall sebagai pengganti cairan saliva dan cairan rumen sagar sapi berfistula rumen sebagai inokulum. Berdasarkan hail praktikum nilai Kecernaan Bahan Kering (KBK) yaitu 48,4829 % dan Kecernaan Bahan Organik yaitu 44,4845 %.



Peningkatan



Kecernaan Bahan Organik sejalan dengan meningkatnya Kecernaan Bahan Kering. Hal ini sesuai dengan yang dikemukakan oleh Andayani (2010) yang menyatakan bahwa sebagian bahan kering terdiri atas bahan organik. Pernyataan



17



ini juga didukung oleh pendapat dari Pinasih (2013) yang menyatakan bahwa Faktor yang mempengaruhi kecernaan bahan organik juga mempengaruhi kecernaan bahan kering. Hal tersebut dikarenakan bahan organik merupakan bagian dari bahan kering tanaman. Kecernaan Bahan Kering dihitung dengan cara berat sampel awal dikurangi BK residu dibagi berat sampel awal kemudian dikalikan seratus persen. Hal ini sesuai dengan Hutabarat et.al (2014) yang menyatakan bahwa Kecernaan bahan kering dihitung dengan cara bahan kering konsumsi dikurangi dengan bahan kering feses, kemudian dibagi dengan bahan kering konsumsi setelah itu dikalikan 100 %. Osuji, et al., (1993) menyatakan faktor-faktor yang mempengaruhi nilai



kecernaan bahan kering ransum adalah tingkat proporsi bahan pakan dalam ransum, komposisi kimia, tingkat protein ransum, persentase lemak dan mineral. Selain itu, faktor level dan waktu diduga berpengaruh terhadap proses fermentasi menyebabkan perlakuan tidak berbeda nyata. Kecernaan Bahan Organik dihitung dengan cara berat sampel awal dikurangi BK residu dibagi berat sampel awal kemudian dikalikan seratus persen. Hal ini mengacu pada peneitian Hutabarat et.al (2014) yang menyatakan bahwa Kecernaan bahan organik dihitung dengan cara bahan organik konsumsi dikurangi dengan bahan organik feses, kemudian dibagi dengan bahan organik konsumsi setelah itu dikalikan 100 %. Menurut Parakkasi (1999), yang menyatakan kecernaan bahan



organik erat kaitannya dengan kecernaan bahan kering, karena sebagian dari bahan kering terdiri dari bahan organik. Tilman et al. (1989), menjelaskan bahwa kecernaan bahan kering dapat mempengaruhi kecernaan bahan organik. Penurunan kecernaan bahan kering akan mengakibatkan kecernaan bahan organik menurun atau sebaliknya. 18



Menurut Suparwi (2017) mengemukakan bahwa Kecernaan bahan kering melalui dua tahap, yaitu proses pencernaan fermentatif dan proses pencernaan hidrolitik. Proses pencernaan fermentatif dilakukan oleh mikroba rumen dan dilanjutkan dengan proses pencernaan hidrolitik. Semakin banyak SPD terfermentasi akan semakin sedikit residu yang dihasilkan, akibatnya semakin tinggi pula nilai kecernaan bahan keringnya. Proses pencernaan bahan kering sangat membutuhkan protein pakan sebagai sumber nutrien esensial bagi ternak dan ketersediaannya yang cukup dapat meningkatkan pertumbuhan dan aktivitas mikroba, sehingga proses pencernaan meningkat. Kecernaan bahan organik erat hubungannya dengan kecernaan bahan kering, karena bahan kering terdiri atas bahan organik, perbedaan keduanya hanya terletak pada kadar abu. Kecernaan bahan organik menggambarkan ketersediaan nutrien pakan. Kecernaan bahan kering dan kecernaan bahan organik mempunyai hubungan yang erat karena nutrien yang terkandung di dalam bahan organik, terkandung pula dalam bahan kering. 4.2.2 Teknik Pengukuran Gas In Vitro (Gas Test) Gas Test adalah cerminan dari terfermentasinya substrat atau bahan pakan. Prinsip dari gas test adalah estimasi kecernaan bahan organik berdasarkan hubungannya dengan produksi gas in vitro (CH4 dan CO2) apabila bahan pakan diinkubasi dengan cairan rumen selama 24 jam. Metode yang digunakan yaitu Menke 1979. Hal ini sesuai dengan Citra (2012) yang menyatakan bahwa Selain menggunakan metode Tilley and Terry 1963, KBO juga dapat diukur dengan metode Menke 1979 yaitu tentang produksi gas test. Metode ini merupakan hubungan kecernaan in vivo dengan produksi gas (CO2 dan CH4) yang diproduksi



19



dari inkubasi in vitro pakan dengan cairan rumen selama 24 jam. Metode ini mencoba menyempurnakan sistem kerja dari metode in vitro sebelumnya, dengan mengukur volume gas yang dihasilkan sebagai parameter untuk menilai kecernaan bahan organik dan energi metabolis dalam bahan makanan dan ransum. Kelebihan dari gas test yaitu menggambarkan kualitas bahan pakan berdasarkan bahan organik,



menggambarkan



aktivitas



antinutrisi dalam



mengahambat pencernaan dan menggambarkan aktivitas mikroba dalam mendegradasi pakan.



Menurut Citra (2012) kelebihan gas test selain dapat



menghitung kecernaan bahan, juga dapat digunakan untuk menentukan besarnya energi yang termetabolis (EM) serta dapat pula untuk menghitung produksi asam lemak atsiri (volatile) atau VFA. Kelebihan lain dari metode ini adalah dapat mengetahui aktivitas zat anti-nutrien yang dapat menghambat proses pencernaan zat makanan. Seperti halnya pengujian bahan pakan hijauan dari legum (kacangkacangan) yang memiliki kadar tanin yang relatif tinggi. Dalam proses pencernaan, tanin menghambat proses penguraian bahan-bahan yang mengandung protein tinggi. Melalui pemakaian gas test ini, aktivitas tannin dapat diketahui pengujian menggunakan penambahan PEG (polyethylene glycol) sebagai determinannya (Jayanegara dan Sofyan, 2008). Sampel yang digunakan dalam praktikum gast test adalah 85% rumput raja dan 15% indigofera. Berdasarkan hasil praktikum dihasilkan perhitungan gas test sebesar 14,067 mM.



Produksi gas terakhir pada hasil praktikum yaitu 47,



sedangkan kelompok 21 yang juga menggunakan 85% rumput raja dan 15% indigofera yaitu 57. Tentu perhitungan gas test pada kelompok 21 juga lebih tinggi.



Kelomok 21 juga penghasil gas test tertinggi dari keseluruhan (6



20



kelompok). Sehingga yang memiliki nilai kecernaan paling tinggi yaitu kelompok 21. Menurut Khairulli (2013) Produksi gas merupakan hasil fermentasi di dalam rumen dan dapat menggambarkan banyaknya bahan organik yang tercerna. Produksi gas yang semakin tinggi menunjukkan bahan pakan semakin baik dalam arti kecernaannya tinggi. Produksi gas dalam fermentasi secara umum proporsional terhadap hasil metabolisme mikroba, sehingga dapat digunakan untuk mengestimasi kecernaan. Faktor yang mempengaruhi gas test yaitu cairan rumen yang berkaitan dengan jumlah mikroba, jenis pakan dan lama inkubasi (semakin lama semakin sedikit pertambahan gas yang dihasilkan. Menurut Khairulli (2013) Produksi gas merupakan hasil fermentasi di dalam rumen dan dapat menggambarkan banyaknya bahan organik yang tercerna. Produksi gas yang semakin tinggi menunjukkan bahan pakan semakin baik dalam arti kecernaannya tinggi. Produksi gas dalam fermentasi secara umum proporsional terhadap hasil metabolisme mikroba, sehingga dapat digunakan untuk mengestimasi kecernaan.



Tingkat



degradasi bahan pakan yang diberikan sangat tergantung pada komposisi fisik dan kimia bahan pakan yang akan didegradasi, aktivitas mikroba rumen, dan ada tidaknya faktor-faktor pembatas seperti senyawa antinutrisi. Setiap bahan pakan yang berbeda komposisi fisik dan kimia akan memberikan nilai degradasi bahan kering dan produk fermentasi yang berbeda pula, tergantung pula oleh daya adaptasi mikroba rumen terhadap substrat yang masuk ke rumen, sehingga mikroba dapat bertahan hidup dan menunjang pertumbuhannya. Produksi gas merupakan parameter aktivitas mikroba rumen dalam mendegradasi pakan. Hasil penelitian menunjukkan semakin lama waktu inkubasi



21



produksi gas semakin meningkat. Hal ini menunjukkan aktivitas mikroba rumen dalam mendegradasi pakan semakin meningkat.



Menurut Prihartini (2008)



Produksi gas yang tinggi menunjukkan aktivitas mikroorganisme dan kaya nutrisi dalam rumen. Produksi gas semakin cepat mencapai puncak bila fraksi yang larut dan mudah terdegradasi semakin banyak. 4.2.3 Pengukuran Konsentrasi VFA Total (Volatil Fatty Acid) VFA merupakan produk fermentasi yang berasal dari bahan yang mengandung karbohidrat maupun protein. VFA akan digunakan sebagai sumber energi bagi ternak ruminansia. VFA yang terdiri atas asam asetat, propionat, dan butirat berperan dalam menyambung energi berupa ATP pada jalur perubahan komponen pakan menjadi VFA serta perubahan propionat menjadi glukosa pada proses glukoneogenesis. Selain itu, VFA juga dapat menyumbangkan kerangka karbon bagi pertumbuhan dan perkembangan mikroba rumen (Sutardi, 1980). Pengukuran VFA dilakukan dengan memasukan 5 ml supernatan kedalam destilator yang sudah dicuci dengan aquades. Kemudian ditambah 1 ml H2SO4 15% untuk menguapkan VFA, destilat ditampung dalam erlenmeyer berisi 5 ml NaOH 0,5N dengan fungsi menangkap VFA yang telah diuapkan H2SO4 sampai volume 100ml karena pada 100ml diasumsikan VFA sudah menguap, kemuadian ditetesi indikator PP 2 tetes yang berfungsi sebagai indikator warna, dan dititrasi dengan HCL 0,5 N yang berfungsi mengikat NaOH yang tidak berikatan dengan VFA. Berdasarkan hasil praktikum yang diperoleh, konsentrasi VFA dari yang didapatkan pada saat praktikum adalah 178 mM. Standar VFA diantara 60-180 mM, untuk hasil sudah sesuai dengan standar. Penjelasan dari asisten bahwa



22



semakin tinggi VFA maka semakin mudah karbohidrat dicerna. Hal tersebut sesuai dengan Bata (1996), mudah tidaknya karbohidrat dicerna dan difermentasi dapat diindikasikan dengan tinggi rendahnya VFA yang dihasilkan. Komposisi VFA dipengaruhi oleh proporsi hijauan dan konsentrat dalam rumen. Proporsi hijauan yang tinggi dalam ransum akan menghasilkan asetat yang tinggi, sebaliknya asetat akan rendah dan propionat akan tinggi apabila ransum mengandung konsentrat yang tinggi. Adanya perbedaan dari hasil pengukuran konsentrasi VFA ini disebabkan karena beberapa hal yaitu diantaranya karena lama waktu inkubasi (Tillman, 1991) dan fermentasi pakan (Bata, dkk. 1996). Tillman (1991), semakin lama waktu inkubasi akan terjadi penurunan populasi bakteri amilolitik akibat fase pertumbuhan bakteri yang lebih cepat dan adanya persaingan dengan protozoa dalam mencerna pati. Penurunan populasi bakteri amilolitik ini juga dapat mempengaruhi produksi VFA yang dihasilkan pada waktu inkubasi 48 jam. Ditambahkan Bata, dkk (1996) bahwa mudah tidaknya karbohidrat dicerna dan difermentasi dapat diindikasikan dengan tinggi rendahnya VFA yang dihasilkan. Semakin tinggi VFA yang diproduksi maka makin mudah karbohidrat tersebut dicerna atau difermentasikan maka makin fermentable bahan tersebut. Menurut Sutardi (1980), konsentrasi VFA pada saat praktikum ini diukur setelah inkubasi selama 48 jam. Oleh karena itu, konsentrasi VFA yang berada dibawah kisaran optimal pertumbuhan mikroba dapat disebabkan oleh penggunaan VFA sebagai sumber kerangka karbon untuk membantu pertumbuhan mikroba selama waktu inkubasi dalam sintesis protein mikroba. Pada waktu inkubasi 48 jam diduga jumlah komponen sumber energi yang relatif mudah



23



dicerna seperti BETN dan lemak untuk diubah menjadi VFA telah berkurang karena telah terlebih dahulu diubah menjadi VFA pada waktu inkubasi 3-48 jam. 4.2.4. Pengukuran Nitrogen- Amonia (N-NH3) Pengukuran NH3 dilakukan dengan memasukkan 1 ml supernatan cairan rumen di bagian kanan cawan conwey dan di bagian kiri ditambahkan 1 ml larutan Na2CO3 jenuh serta di bagian tengah ditambahkan 1 ml larutan asam borat. Cawan digoyang agar supernatan dan larutan Na2CO3 jenuh bercampur. Setelah 24 jam dalam suhu ruang dilakukan titrasi dengan H2SO4 0,01 N sampai berubah menjadi warna merah muda. Protein pakan pertama kali dihidrolisis oleh mikroba rumen dengan enzim proteolitik menjadi bentuk yang lebih sederhana seperti oligopeptida dan asam amino (Arora, 1989). Kemudian dilanjutkan dengan kecernaan menjadi amonia dan menghasilkan produk samping berupa gas CH4, CO2, asam keto alfa dan VFA. Menurut Sutardi (1980), amonia berfungsi sebagai sumber N yang digunakan dalam sintesis protein mikroba, sehingga dibutuhkan 5-17,65 mM amonia untuk mendukung pertumbuhan mikroba. Hasil percobaan didapatkan kadar N-NH3 sebesar 12,6 mM. Sutardi (1980) menyatakan faktor keberhasilan dalam mengukur kadar NH3 yaitu kualitas cairan rumen, perlakuan pasca penampungan rumen dan ketelitian dalam praktikum. Sumber protein bagi ternak ruminansia harus mampu menyediakan nitrogen yang mudah terdegradasi dalam rumen untuk sintesis protein mikroba.Pencernaan protein di dalam rumen hanya terbatas oleh mikroorganisme yang ada di dalam rumen. Sekitar 40% bakteri rumen memilik aktivitas proteolitik.Bakteri ini memiliki enzim protease yang terikat pada permukaan sel



24



dan siap kontak dengan 21 subtrat/pakan. Efektivitas aktivitas mikroba dalam rumen membutuhkan kondisi yang optimal, misalnya pH 5-6 dengan temperatur sekitar 39oC seperti yang dilakukan pada saat praktikum. Konsentrasi N-NH3 total ditentukan juga oleh pH rumen. Tingkat pH rumen relatif tinggi pada ternak yang mengkonsumsi hijauan, terutama hijauan yang berasal dari berasal dari rumput.(Fariani et al 2008). Pada umumnya rumput muda memiliki kandungan lignin yang rendah sehingga tingkat kecernaan serat kasarnya akan lebih tinggi (Tillman, 1986). N-NH3 merupakan sumber energi utama bagi ternak ruminansia dan dihasilkan dari proses fermentasi pakan dalam rumen (Jayanegara,2009). Banyak hal yang mempengaruh komposisi N-NH3, salah satunya adalah komposisi populasi mikroba rumen. Populasi mikroba berkembang lebih cepat, sehingga proses fermentasi di dalam rumen tidak optimal, hal ini sejalan dengan pendapat Fariani et al,(2008) yang menyatakan bahwa apabila fermentasi di dalam rumen kurang optimal, maka N-NH3 rumen yang dihasilkan cenderung rendah.Selain itu, populasi bakteri Streptococcus dalam rumen yang meningkat akan membebaskan sejumlah asam laktat dan terakumulasi di dalam rumen sehingga terjadi penurunan pH di dalam rumen yang menyebabkan beberapa jenis mikroba terhambat pertumbuhannya.



25



V. PENUTUP 5.1 Kesimpulan 1. didapatkan hasil praktikum nilai Kecernaan Bahan Kering (KBK) yaitu 48,4829 % dan Kecernaan Bahan Organik yaitu 44,4845 %. Hal ini membuktikan bahwa Peningkatan Kecernaan Bahan Organik sejalan dengan meningkatnya Kecernaan Bahan Kering. Ketersediaan nutrient dalam pakan sebesar 44,4846 %. 2. Produksi gas terakhir pada hasil praktikum yaitu 47, gas yang dihasilkan cukup tinggi sehingga dapat dikatakan bahwa kecernaan nutrient pakan cukup tinggi. 3. Hasil VFA yang didapat yaitu 178, hal ini menunjukan kelebihan karbohidrat yang dapat menyebabkan ternak mengalami kembung atau Bloat. 4. Hasil N-NH3 yang diperoleh yaitu 12,6, hal ini menunjukkan bahwa telah terjadi sintesis protein mikroba yang sesuai standar. 5.2 saran. Penggunaan alat- alat praktikum lebih hati-hati karena sebagian besar alat yang digunakan adalah dalam bentuk gelas atau kaca sehingga mudah pecah. Pembacaan skala pada alat tabung guna pengukuran gas test ataupun penimbangan sampel dan saat titrasi harus lebih teliti dan cermat, karena dapat menyebabkan kesalahan dalam hasil praktikum yang ditunjukkan degan hasil yang negative dan hasil yang terpaut jauh dengan standar.



26



DAFTAR PUSTAKA Andayani, Jul. 2010. Evaluasi Kecernaan In Vitro Bahan Kering, Bahan Organik dan



Protein Kasar Penggunaan Kulit Buah Jagung Amoniasi dalam



Ransum Ternak Sapi. Jurnal Ilmiah Ilmu-Ilmu Peternakan, 13(05). Arora, S. P. 1989. Pencernaan Mikroba pada Ruminansia. Edisi Indonesia. Penerbit Gajah Mada University Press. Yogyakarta. Bata, M. I. Irawan, S. Rahayu dan M. Pangestu. 1996. Pengaruh Suplementasi Ampas Tahu Pada Onggok Terhadap Produk Fermentasi Rumen, Kecernaan Bahan Kering Dan Bahan Organik Secara In Vitro. Laporan Hasil Penelitian. Fakultas Peternakan Unsoed. Purwokerto. Beuvink, J.M.W., And Spoelstra, S.F., 1992. Interactions between substrate, fermentation end-products, buffering system and gas production upon fermentation of different carbohydrates by mixed rumen microorganism in vitro. Appl. Microbiol. Biotechnol. 37, 505-509. Centre for Africa). Addis Ababa, Ethiopia. Citra, Dwi Fitriani. 2012. Karakteristik In Vitro dan Produksi Gas Test Serat Kelapa Sawit



yang Difermentai dengan Pleurotus ostreatus untuk Pakan



Hijauan Alternatif.



Skripsi.



Fakultas Peternakan, Institut Pertanian



Bogor. Fariani et al.2008. Pengaruh Tipe Konsentrat Sumber Energi dalam Ransum Sapi Perah Berproduksi tinggi terhadap Produksi dan Komposisi Susu. Buletin Peternakan. 21 I : 45-54. Fathul, F. dan S. Wajizah. 2010. Penambahan Mikromineral Mn dan Cu dalam Ransum terhadap Aktivitas Biofermentasi Rumen Domba Secara In Vitro. JITV. 15(1): 9-15. Harahap, Nurainun; E. Mirwandhono dan N. D. Hanafi. Uji Kecernaan Bahan Kering, Bahan Organik, Kadar NH3 dan VFA pada Pelepah Daun Sawit Terolah pada Sapi



Secara In Vitro. Jurnal Peternakan, 1 (01).



Herdian, H., L. Istiqomah, A. Febrisiantosa., dan D. Setiabudi. 2011. Pengaruh Penambahan Daun Morinda citrifolia sebagai Sumber Saponin terhadap Karakteristik Fermentasi, Defaunasi Protozoa, Produksi Gas dan Metana Cairan Rumen secara In Vitro. JITV 16(2): 98-103.



27



Hutabarat, Antonius; M. Tafsin dan A. H. Daulay. 2014. Kecernaan Bahan Kering dan



Bahan Organik Ransum yang Mengandung Kulit Buah



Kakao dan Kulit Buah Pisang



Difermentasi Berbagai Bioaktivator



pada Kambing Kacang Jantan. Jurnal



Peternakan Integratif, (3):3



:281-290. Jakarta. Jayanegara, A. & A. Sofyan. 2008. Penentuan Aktivitas Biologis Tannin Beberapa Hijauan



secara In Vitro Menggunakan Hohenheim Gas Test dengan



Polietilen glikol sebagai



Determinan. Med. Pet. 31: 44-52.



Jayanegaraa, A., A. Sofyanb , H.P.S. Makkara & K. Beckera. 2009. Kinetika Produksi Gas, Kecernaan Bahan Organik dan Produksi Gas Metana In Vitro pada Hay dan Jerami yang Disuplementasi Hijauan Mengandung Tanin. Jurnal Media Peternakan.32 (2): 120-129. Khairulli, Gumilang. 2013. Kinetika Produksi Gas dan Kecernaan In Vitro Pakan dengan Penambahan



Mineral



Organik



Hasil



Inokulasi



dengan



Saccharomyces cerevisiae dan Suplementasi Hijauan Bertanin.



Skripsi.



Fakultas Peternakan, Institut Pertanian Bogor. Makkar, H.P.S. & K. Becker. 1998. Do tannins in leaves of trees and shrubs from Africa and Himalayan regions differ in level and activity? Agroforestry Syst. 40: 59-68. Menke, K.H., Raab,L., Salewski, A., Steingass, H., Fritz, D., And Schneider, W., 1979 The estimation of the digestibility and metabolisasble energy content of ruminant feedingstuffs from the gas production when they are incubated with rumen liquor. J. Agric. Sci. 93, 217-222. Muhtarudin. 2007. Penggunaan Mineral Organik dalam Upaya Meningkatkan Bioproses Rumen, Pertumbuhan, serta Kualitas Daging Kambing dan Sapi. Buletin Pembibitan Provinsi Lampung. 2(2): 108-116. Nurhayati, M. D. 2008. Kajian in vitro fermentabilitas dan kecernaan ransum komplit kombinasi rumput lapang, konsentrat dan suplemen pakan multinutrien. Skripsi. Fakultas Peternakan. Institut Pertanian Bogor, Bogor.



28



Osuji P O, Nsahlai I V and Khalili H. 1993. Feed evaluation. ILCA (International Livestock Parakkasi, A. 1999. Ilmu Nutrisi dan Makanan Ruminan. Universitas Indonesia Press. Pinasih, C.



2013.



Kecernaan Bahan Kering dan Bahan Organik Rumpuut



Benggala



(Panicum maximum) Secara In Vitro pada Berbagai Upaya



Perbaikan Tanah Salin.



Animal Agriculture Journal, 2(4): 73-88.



Prayuwidayati, M. dan Y. Widodo. 2007. Penggunaan Bagas Tebu Teramoniasi dan Terfermentasi dalam Ransum Ternak Domba. JITV. 10(1): 9-12. Prihartini, Indah;



S.Chuzaemi dan O. Sofjan.



2017.



Parameter Fermentasi



Rumen dan Produksi Gas In Vitro Jerami Padi Hasil Fermentasi Inokulum Lignochloritik. Jurnal Protein, 15 (1). Ranjhan, S.K. 1977. Animal Nutrition and feeding. Practice in India. Second Edition. Vicas Publishing House PVT Ltd, New Delhi. Soepranianondo, K. 2008. Dampak isi rumen sapi sebagai substitusi rumput raja terhadap produk metabolik pada kambing Peranakan Etawa. Media Kedokteran Hewan. 21: 94-96. Suparwi; D. Santoso dan M. Samsi. 2017. Kecernaan Bahan Kering dan Bahan Organik,



Kadar Amonia dan VFA Total In Vitro Suplemen Pakan



Domba. Pengembangan



Sumber Daya Perdesaan dan Kearifan Lokal



Berkelanjutan (VI) 17-18. Sutardi, T. 1977. Landasan Ilmu Nutrisi. Fakultas Peternakan. Institut Pertanian Bogor, Bogor. Sutardi, T., N. A. Sigit, dan T. Toharmat. 1983. Standarisasi Mutu Protein Bahan Makanan Ruminansia berdasarkan Parameter Metabolismenya oleh Mikroba Rumen. Laporan Penelitian. Fakultas Peternakan. Institut Pertanian Bogor. Bogor. Sutardi, T., N. A. Sigit, dan T. Toharmat. 1983. Standarisasi Mutu Protein Bahan Makanan Ruminansia berdasarkan Parameter Metabolismenya oleh Mikroba Rumen. Laporan Penelitian. Fakultas Peternakan. Institut Pertanian Bogor. Bogor. Syahrir, K. G. Wiryawan, A. Parakkasi, M. Winugroho., dan O. N. P. Sari. 2009. Efektivitas Daun Murbei Sebagai Pengganti Konsentrat



29



Tillman, A.D., Hartadi, H., Reksohadiprojo, S., Prawirokusumo, S., dan Lebdosoekojo, S. 2001. Ilmu Makanan Ternak Kasar. UGM Press, Yogyakarta. Tillman. 1991. Nutrisi Ternak Dasar. UGM Press. Yogyakarta. Arora, S. P. 1995. Pencernaan Mikrobia Pada Ruminansia. Gadjah Mada University Press, Yogyakarta.



30