Rotifera [PDF]

Citation preview

Rotifera, Artemia, dan copepoda hidup pakan untuk larva ikan dalam akuakultur PENDAHULUAN Meskipun ada kemajuan besar dalam pengembangan larva yang diformulasikan pakan dan adaptasi berbagai teknik untuk mengurangi jumlah diperlukan (mis. melalui teknik kebun binatang yang ditingkatkan, pola makan dan praktik pemberian makan), penggunaan makanan hidup di seluruh dunia di tempat pembenihan sebagian besar spesies ikan dan kerang masih penting dan diperkirakan akan tetap ada jadi dalam waktu dekat. Berbeda dengan lingkungan alam, tempat larva memiliki akses ke berbagai macam organisme plankton, jaring makanan buatan diterapkan di tempat penetasan hanya terdiri dari beberapa spesies. Terlepas dari mikroalga (yang dibahas dalam bab lain buku ini), rotifera (Brachionus spp.), Artemia udang air asin dan (pada tingkat lebih rendah) copepoda adalah makanan hidup utama yang digunakan. Rotifera, karena ukurannya yang kecil, cocok untuk tahap paling awal larva ikan dan udang. Namun, mereka membutuhkan budaya agak padat karya yang, apalagi, tidak selalu dapat diandalkan, dan crash budaya sesekali tetap menjadi kenyataan. Namun demikian, dalam beberapa tahun terakhir teknik telah meningkat pesat dengan pakan baru dan sistem budidaya (mis. sistem semi kontinu dan kepadatan tinggi) sedang dikembangkan. Popularitas Artemia sebagai item makanan hidup sebagian besar karena kenyamanan dalam penggunaannya karena dapat menetas dalam waktu 24 jam dari kista aktif yang dapat dengan mudah didistribusikan dan disimpan untuk waktu yang lama. Apalagi secepatnya disadari bahwa nilai gizinya tidak optimal untuk semua spesies larva predator, berbagai teknik dikembangkan untuk meningkatkan dan memanipulasi komposisinya, awalnya terutama kandungan vitamin dan asam lemak Profil. Saat ini, teknik pengayaan ini meluas ke seluruh jajaran makro dan mikronutrien dan juga mencakup teknik untuk mengurangi atau mengubah komunitas mikroba atau



menggabungkan terapi (vaksin, obat-obatan, imunostimulan,. . .). Copepod dianggap unggul dalam hal komposisi gizi (terutama untuk spesies ikan air dingin) karena mereka mengandung kadar asam lemak tak jenuh tinggi dan memiliki keseimbangan yang lebih baik antara kelas trigliserida dan fosfolipid lipid. Meskipun di sini juga banyak kemajuan telah dibuat dalam beberapa tahun terakhir, teknik untuk kultur yang andal dalam skala besar tetap menjadi hambatan utama. Bab ini mengulas teknik yang digunakan saat ini untuk membudidayakan, memanen, merawat dan lestarikan tiga kelompok makanan hidup ini. Tren baru diidentifikasi dan kemungkinan untuk penelitian dan pengembangan di masa depan ditetapkan.



5.2 Rotifera sebagai pakan hidup: budidaya dan panen Rotifera, terutama milik genus Brachionus, telah digunakan sebagai hidup organisme makanan dalam akuakultur sejak tahun 1970-an (Lubzens et al., 2001). Banyak Larva ikan laut sangat kecil saat mereka menetas. Akibatnya, mereka membutuhkan mangsa kecil selama tahap kehidupan awal (Conceição et al., 2010). Rotifera telah menjadi makanan hidup yang paling disukai karena mereka memiliki ukuran yang cocok untuk sebagian besar larva ikan laut, dapat dibudidayakan pada kepadatan tinggi, memiliki tingkat reproduksi tinggi (karena kemungkinan untuk mereproduksi sebagian tergantung pada lingkungan), memiliki suhu tinggi dan toleransi salinitas, berenang perlahan dan merupakan pengumpan filter (Lavens dan Sorgeloos, 1996). Berkat karakteristik terakhir ini, rotifera dapat dikultur pada banyak pakan sumber (mis. mikroalga atau sel ragi) dan, yang lebih penting, mereka komposisi nutrisi dapat disesuaikan dalam waktu yang relatif singkat (disebut pengayaan) agar lebih sesuai dengan kebutuhan nutrisi predator (mis. larva ikan atau udang). Dalam budaya rotifera air tawar, B. calyciflorus,



pH penting karena keseimbangan amonia-amonium. Namun, meskipun rotifera toleran terhadap banyak faktor abiotik, tiba-tiba keruntuhan kultur massa memang terjadi yang mungkin terkait dengan infeksi rotifer birnavirus atau jamur (Comps and Menu, 1997). Pembenihan mencoba menghindari masalah ini dengan membiakkan rotifera lebih banyak dari yang dibutuhkan di tangki terpisah, dan kultur stok volume yang berbeda disimpan sebagai cadangan. Untuk



mendapatkan



rotifers



dalam



jumlah



yang



cukup



untuk



memulai



skala



besar



budaya, rotifera dibiakkan dalam meningkatkan volume mulai dari sekecil 50 mL (stok kultur) hingga 50 L. Rotifera dipanen dari satu atau beberapa tangki 50 L digunakan sebagai inokulum untuk kultur skala besar. Di sebagian besar kasus, rotifera dibiakkan secara partenogenetis sepanjang tahun, yang berarti upaya / biaya juga diperlukan di luar musim larva (ikan atau krustasea). Sejak 1995, spesies B. plicatilis telah dibagi menjadi dua spesies, B. plicatilis dan B. rotundiformis (Segers, 1995). Melalui penggunaan molekuler teknik, spesies B. plicatilis telah dibagi menjadi sembilan garis keturunan yang berbeda secara genetik (Gomez et al., 2002). Namun, Suatoni et al. (2006) berhipotesis bahwa setidaknya ada 14 spesies dalam kompleks B. plicatilis pada pola COI dan ITS1. Dari semua garis keturunan genetik, B. plicatilis sensu strictu, B. ‘Nevada’, B. ‘Cayman’ dan B. ‘Manjavacas’ telah diperiksa yang paling banyak dalam studi terkait akuakultur. Papakostas et al. (2006) dan Dooms et al. (2007) telah mengidentifikasi B. ‘Nevada’, B. ‘Cayman’ dan B. ‘Austria’ sebagai lebih umum di tempat penetasan Eropa. Meskipun rotifera milik Kompleks B. plicatilis masih disebut sebagai SS, S, SM atau tipe-L menurut ukurannya, ada perbedaan konversi pakan, tingkat pertumbuhan, dan komunitas mikroba terkait di antara garis keturunan ini yang mungkin penting untuk akuakultur (Kostopoulou dan Vadstein, 2007; Qi et al., 2009a) 5.2.1 Budaya Baik untuk rotifer air tawar dan laut, tergantung pada salinitas



lingkungan predator, ukuran yang dapat dikonsumsi oleh predator adalah karakteristik terpenting dalam pemilihan spesies rotifer / genotipe yang akan berbudaya di tempat penetasan. Budaya komersial rotifer hampir sepenuhnya terbatas pada spesies dari genus Brachionus (Papakostas et al., 2006). Loop partenogenetik dalam siklus hidup (Gbr. 5.1) dengan tinggi tingkat reproduksi menghasilkan keturunan yang identik dengan karakteristik yang sama (untuk perincian, lihat Lubzens dan Zmora, 2003). Untuk menentukan jumlah pakan yang perlu disediakan, beberapa sub-sampel (setidaknya tiga) diminum setiap hari. Sebelum menghitung rotifera, yang terbaik adalah mengamati perilaku mereka. Rotifera harus berenang bebas (tidak melekat pada sisi-sisi ruang hitung), karena rotifer berkualitas rendah berhenti menghabiskan energi dalam berenang dan menyaring partikel saat terpasang. Tingkat berenang juga harus tinggi, lambat rotifera bergerak dapat menjadi indikasi kelaparan dan / atau kualitas air yang buruk (Korstad et al., 1995). Karakteristik terpenting dari status fisiologis rotifera adalah rasio telur. Ini adalah rasio jumlah telur dalam sampel yang diberikan lebih dari jumlah total perempuan dalam sampel itu. Rasio telur menunjukkan dalam tahap apa budaya rotifer itu (eksponensial atau stasioner) dan, lebih penting, ini memberikan perkiraan jumlah rotifers yang akan dibuat diharapkan hari berikutnya. Rasio telur tidak boleh lebih rendah dari 10% karena ini dapat mengindikasikan keruntuhan dalam waktu dekat (Snell et al., 1987).



Dari sudut pandang pengaturan, ada dua cara utama untuk memutar rotifera dalam skala besar yang



penting untuk tempat penetasan: kultur batch dan kultur resirkulasi. Dari sudut pandang manajemen budaya, semua rotifera dari a budaya dapat dipanen dalam satu waktu atau sebagian rotifera berbudaya dapat sering dipanen (mis. setiap hari). Budaya batch Kultur batch adalah metode kultur yang paling banyak digunakan (Dhert et al., 2001). Dalam metode kultur batch, seseorang dapat membedakan dua cara berbeda: (i) Volume konstan dengan peningkatan kepadatan rotifer; dan (ii) Rotifer konstan kepadatan dengan peningkatan volume. Ketika volume konstan digunakan, rotifera yang berasal dari budaya stok atau dari kultur bets sebelumnya diperkenalkan dalam tangki bersih dengan kepadatan sekitar 250 rotifers / mL (Suantika et al., 2000). Saat rotifera diperkenalkan dalam tangki dengan kepadatan rendah (mis. 50 rotifera / mL), laju filtrasi total rendah, yang pada gilirannya memungkinkan protozoa yang terkontaminasi berkembang biak. Rotifera diberi makan mikroalga, sel ragi atau produk komersial, berdasarkan pada satu atau kedua mikroorganisme sebelumnya, menurut jumlah rotifera. Umpan dapat diberikan secara manual atau melalui perangkat otomatis (mis. pompa peristaltik). Tingkat pertumbuhan rotifer bisa sekitar 1,5 / hari (Kostopoulou dan Vadstein, 2007). Sebagai periode budaya terus, kualitas air berkurang. Ini memiliki dampak negatif pada kinerja rotifer yang mengarah ke tingkat pertumbuhan negatif. Dalam praktiknya, rotifer budaya batch dijalankan selama dua hingga empat hari. Kemudian, seluruh budaya dipanen. Mayoritas rotifera digunakan sebagai makanan hidup dan sisanya dapat digunakan sebagai inokulum untuk kultur batch berikut. Ketika rotifera dikultur pada kepadatan rotifer konstan, tangki diisi hanya sebagian dan rotifera diinokulasi pada kepadatan tinggi (750 rotifera / mL) (Kotani et al., 2009). Keesokan harinya, peningkatan kepadatan rotifer dikompensasi dengan menambahkan air bersih baru ke dalam kultur. Penambahan baru air menjaga kualitas air lebih konstan, seperti metabolit, nitrit dan amonia diencerkan setiap hari. Budaya dapat dipertahankan selama 27 hari



(Kotani et al., 2009). Keuntungan dari bentuk terakhir dari kultur batch adalah rotifer laju pertumbuhan lebih konstan, menghasilkan rotifera yang fisiologis lebih aktif (Kotani et al., 2009). Namun, periode budaya terbatas karena untuk akumulasi amonia (De Araujo et al., 2000, 2001). Bentley et al. (2008) telah berhasil dalam budaya massa rotifera yang diberi makan Nannochloropsis mati oculata dengan menetralkan amonia menggunakan natrium hidroksimetesulfonat dalam budaya berkelanjutan. Penambahan asam gamma-aminobutyric (GABA) untuk air biakan menyebabkan biakan rotifer berkinerja lebih baik bahkan di hadapan 3,1 mg / mL amonia gratis. GABA dapat meningkatkan asimilasi efisiensi (Gallardo et al., 1999).



Sistem sirkulasi budidaya (RAS) Karena produksi rotifer menurun karena kualitas air dalam batch yang rendah budaya, penggunaan RAS untuk rotifers budaya telah dipelajari (Suantika et al., 2000). Sistem kultur ini memungkinkan kepadatan rotifer yang lebih tinggi dan tingkat reproduksi yang lebih tinggi. Budaya rotifer dapat dipertahankan lebih lama periode (mis. beberapa minggu). Akibatnya, tempat penetasan bisa berjalan lebih kecil sistem skala dan menghasilkan rotifera dengan biaya lebih murah dibandingkan dengan batch budaya (Suantika et al., 2003). Sebagian besar waktu, sistem budaya ini dioperasikan secara semi-kontinyu. Begitu kepadatan rotifer melebihi kepadatan yang diberikan, bagian dari budaya dipanen dan bagian dari air diganti (Suantika et al., 2003). Jenis budaya ini telah memungkinkan berjalannya budaya super intensif di mana kepadatan rotifer mencapai lebih dari 10.000 rotifera / mL (Yoshimura et al., 1996; Suantika et al., 2001). Untuk menjaga kadar oksigen terlarut di atas 4 ppm (Fulks and Main, 1991), oksigen murni (Yoshimura et al., 1996) atau ozon (Suantika et al., 2001) harus diterapkan. Namun, pemeliharaan kultur rotifer superintensif sangat rumit dan mungkin melibatkan



set terkomputerisasi (Yoshimura et al., 2003). 5.2.2 Pemanenan Kultur rotifer dapat dipanen sekaligus atau sebagian (lihat di atas). Sebagai air biakan rotifer memiliki muatan organik tinggi (pakan rotifer, rotifera mati, masalah feses), bakteri berkembang dengan cepat ke kepadatan tinggi (Skjermo dan Vadstein, 1993). Oleh karena itu, perlu untuk memisahkan rotifera dari kultur air dan pindahkan floc yang mengandung partikel pakan, bakteri, dan pakan yang tidak dimakan, dan rotifera yang dipanen juga harus dikonsentrasikan. Ini adalah dicapai dengan menyaring rotifera dan air kultur melalui dua saringan, yang pertama mempertahankan partikel yang lebih besar dan yang kedua mempertahankan rotifera sementara bakteri dan umpan rotifer lulus. Ukuran mesh tergantung pada ukuran spesies rotifer berbudaya (Lavens dan Sorgeloos, 1996). Setelah panen, rotifera dapat digunakan segera (tergantung pada komposisi nutrisi) atau dapat disimpan pada suhu rendah (4 ° C) (Assavaaree et al., 2001). Makridis dan Olsen (1999) menyimpulkan bahwa rotifera bahkan dapat disimpan di 4–5 ° C hingga lima hari tanpa kehilangan nilai gizi yang signifikan. 5.3 Pakan rotifera: jenis, teknik dan nutrisi 5.3.1 Jenis pakan Rotifera dapat diberi makan berbagai jenis pakan selama rentang ukuran partikel dari 0,3 mm hingga 21 mm (Vadstein et al., 1993; Hansen et al., 1997). Beberapa spesies mikroalga dapat digunakan, di antaranya Nannochloropsis spp., Chlorella spp., Tetraselmis spp. dan Isochrysis galbana adalah yang terbanyak umum (Conceição et al., 2010). T. suecica ditemukan menghasilkan yang optimal merumput (Lubzens dan Zmora, 2003). Sayegh et al. (2007) telah menguji efek dari empat strain I. galbana dan satu Nannochloropsis sp. regangan



dan menemukan efek signifikan dari strain ini pada tingkat reproduksi rotifer. Efeknya tidak besar dan mungkin tidak penting untuk produksi komersial. Namun, mereka menyimpulkan bahwa efek regangan ini dapat dipertimbangkan untuk memaksimalkan produktivitas Mikroalga dapat dibudidayakan di situs atau alga kental (pasta alga) dapat dibeli. Mikroalga hidup memiliki keunggulan yaitu mempertahankan komposisi nutrisinya lebih lama, memiliki efek negatif pada beberapa bakteri patogen (Natrah et al., 2011) dan memiliki efek positif pada kualitas air dibandingkan dengan pasta alga. Penggunaan pasta alga, di sisi lain, memiliki keuntungan bahwa pasokan dan komposisi nutrisi mungkin lebih stabil dan memungkinkan penyediaan pakan yang cukup untuk kultur rotifer intensif atau superintensif skala besar (Yoshimura et al., 1996). Ragi Baker juga merupakan makanan umum. Namun, ragi mengandung asam lemak tidak jenuh yang sangat rendah (HUFA), yang menghasilkan rotifera dengan kualitas gizi yang lebih rendah untuk larva dibandingkan dengan rotifer yang diberi makan mikroalga (Conçeicão et al., 2010). Hal ini sangat penting bagi larva laut karena ikan laut tidak dapat mensintesis asam eikosapentaenoat (EPA) dan DHA asam docosahexaenoic sendiri dari asam linolenat (untuk ulasan lihat Tocher, 2010). Komposisi nutrisi rotifera dapat disesuaikan melalui pengayaan (mis. Pemasukan nutrisi spesifik / bahan kimia penting untuk larva). Ada banyak feed yang diformulasikan



di



pasaran



sebagian besar didasarkan pada ragi roti dan / atau mikroalga. Karena ragi roti kurang dalam HUFA, HUFA dapat dilapisi ke ragi kering semprot selama proses pembuatan, menghasilkan pakan yang disesuaikan lebih baik. Biotipe rotifer yang berbeda memiliki persyaratan pertumbuhan optimal yang berbeda. Pada konsentrasi makanan yang tinggi, B. ‘Cayman’ memiliki tingkat pertumbuhan yang lebih tinggi dibandingkan dengan B. plicatilis sensu strictu dan B. ‘Nevada’, ketika diberi makan N. oculata (Kostopoulou dan Vadstein, 2007). Pengamatan yang sama dilakukan ketika biotipe rotifer ini diberi makan diet berbasis ragi komersial (Qi et al., 2009b). Tingkat pertumbuhan yang lebih tinggi dikaitkan dengan perkembangan telur yang lebih cepat di B. ‘Cayman’ (Kostopoulou dan Vadstein, 2007). Karena



rotifera adalah pengumpan filter, mengikuti respons fungsional tipe-1 (Holling, 1966), penting untuk menjaga suspensi umpan pada kepadatan yang ditentukan. Kepadatan pakan yang terlalu rendah jelas akan menghasilkan konsumsi yang lebih rendah dan selanjutnya tingkat pertumbuhan yang lebih rendah. Namun, kepadatan pakan yang sangat tinggi akan menyebabkan tingkat pertumbuhan yang berkurang juga, karena tingkat produksi enzim pencernaan terlalu lambat untuk jumlah pakan yang memasuki saluran



pencernaan



(Rothhaupt,



1990).



5.3.2 Teknik pemberian pakan Untuk menjaga kepadatan pakan dalam kisaran yang optimal, pakan harus diberikan kepada rotifera beberapa kali per hari. Ini telah menyebabkan sistem dengan pemberian makan terus menerus (Yoshimura et al., 1996; Suantika et al., 2000) menggunakan pompa peristaltik. Pengamatan otomatis dari kepadatan rotifer, perhitungan jumlah pakan yang diperlukan dan distribusi pakan ke tangki rotifer telah dipelajari di Norwegia (Alver et al., 2010). Dalam praktiknya, banyak tempat pembenihan, tetapi juga lembaga penelitian, menyediakan campuran pakan untuk rotifera: mikroalga, ragi atau makanan komersial berbasis ragi dan minyak (Srivastava et al., 2011). Campuran pakan ini diterapkan sebagian besar waktu karena pasokan ganggang hidup dan in memesan, untuk mengurangi biaya pakan dan mencapai rotifera yang kualitas nutrisinya lebih baik. Pakan yang diberikan juga memiliki efek pada komunitas mikroba yang terkait dengan rotifer yang dibiakkan (lihat Bagian 5.4.1 tentang aspek mikroba). 5.3.3 Nilai gizi dan teknik pengayaan Nilai gizi HUFA sangat penting selama pengembangan larva laut. DHA adalah komponen utama dalam perkembangan otak dan sistem saraf (Tocher, 2010). Namun, tidak hanya jumlah HUFA, tetapi juga rasio antara HUFA berbeda (DHA, EPA dan asam arakidonat (ARA)) yang penting (Tocher, 2010) untuk larva laut. Oie dan Olsen (1997) mengamati bahwa kandungan protein dan lipid dan rasio DHA / EPA dari rotifera bervariasi sesuai dengan tingkat pertumbuhan dan ransum pakan. Ini positif korelasi antara tingkat pertumbuhan (aktivitas fisiologis) dan kadar asam lemak juga diamati oleh Kotani et al. (2009). Selain status fisiologis rotifer, pakan yang diterapkan selama kultur juga memiliki pengaruh besar pada kualitas gizi mereka (lihat ‘jenis



pakan ’di atas). Rotifer yang dibiakkan hanya pada ragi roti rendah dalam HUFA (Coçeicão et al., 2010). Tingkat HUFA spesies alga (mis. I. galbana T-ISO strain) tergantung pada fase pertumbuhan dan protokol kultur (Tzovenis et al., 2003). Kandungan protein rotifera bervariasi antara 28 dan 63% dari berat kering (DW) (Lubzens dan Zmora, 2003), di mana sekitar 50% adalah protein larut (Srivastava et al., 2006). Kandungan lemak rotifera adalah 9–28% dari berat kering, dimana 34-43% adalah fosfolipid dan 20–55% triasilgliserol (Lubzens dan Zmora, 2003). Rotifer yang diberi makan mikroalga memiliki konsentrasi vitamin B1, B2, C dan E yang tinggi (van der Meeren et al., 2008). Kandungan vitamin dari pakan tercermin dalam rotifer. Rotifera dibiakkan pada campuran Chlorella sp. dan I. galbana dapat mencapai 2289 mg asam askorbat / g DW dalam kultur skala lab (Merchie et al., 1995). Beberapa bakteri yang ada dalam kultur rotifer dapat menghasilkan vitamin B12 yang diambil oleh rotifera (Yu et al., 1989). Pengayaan Komposisi rotifera dapat dimodifikasi dalam waktu yang relatif singkat dengan menghadirkan partikel dalam kisaran yang sesuai (0,3–21 mm; Vadstein et al., 1993; Hotos, 2002). Ini akan dicerna karena sifatnya memberi makan filter yang menghasilkan pengayaan nutrisi. Karena HUFA sangat penting bagi larva laut, banyak penelitian telah berfokus pada potensi untuk menambah konten HUFA dari pakan hidup. Melalui pengayaan 6 jam, nilai kalori rotifera dapat hampir dua kali lipat; dari 1,34 × 10-3 kal / rotifer menjadi 2,00 × 10-3 kal / rotifer (FernandezReiriz et al., 1993). Ada beberapa produk pengayaan HUFA komersial di pasaran (Haché dan Plante, 2011). Namun, rotifera juga dapat diperkaya dengan menerapkan mikroalga (Kotani et al., 2009; Ferreira et al., 2009). Kotani et al. (2009) dan Ferreira et al. (2009) menggunakan N. oculata dan N. gaditana, masing-masing. Bergantung pada status fisiologis rotifer (lihat di atas), jumlah HUFA yang lebih tinggi diperoleh (Kotani et al., 2009). Meskipun bakteri yang ada dalam kultur rotifer dapat menyediakan vitamin B12 (Yu et al., 1989) dan mikroalga seperti Chlorella sp. dan I. galbana menyediakan vitamin C (Merchie et al., 1995), pengayaan ekstra tiamin (sebagai tiamin HCl) dan vitamin E (sebagai DL-alpha-tokoferol) menyebabkan



peningkatan konsentrasi dalam rotifers setelah empat hari. Di sisi lain, penambahan vitamin A (sebagai retinyl palmitate) dalam makanan tidak menyebabkan peningkatan yang signifikan dalam kandungan vitamin A (Srivastava et al., 2011). Karena copepoda dan nauplii mereka adalah makanan alami bagi banyak larva laut, rotifera juga diperkaya dengan yodium untuk mendapatkan kadar yodium yang serupa dengan copepoda (Srivastava et al., 2006).



Rotifera, Artemia dan copepoda sebagai pakan hidup untuk larva ikan 165 © Woodhead Publishing Limited, 2013 Selenium penting dalam pengembangan tiroid dan hanya hadir dalam jumlah rendah (sekitar 0,08 mg / kg DW) dalam rotifer berbudaya dibandingkan dengan 2-5 mg / kg DW pada copepoda liar (Hamre et al., 2008). Melalui pengayaan selama 3 jam dengan ragi selenized, Ribeiro et al. (2011) mampu mendapatkan tingkat Se 35,9-104,0 g / kg DW dalam rotifera. Karena ini jauh lebih tinggi daripada tingkat copepoda liar, jumlah yang lebih rendah dari ragi selen dapat digunakan. Karena rotifera dapat memiliki 2,43 × 109 CFU / g rotifer berat basah dan karena muatan organik sangat tinggi selama proses pengayaan, beban bakteri rotifera dapat meningkat secara signifikan (Haché dan Plante, 2011). Oleh karena itu, rotifera dibilas secara menyeluruh selama panen dan proses pengayaan disimpan sesingkat mungkin. 5.4 Rotifera sebagai pakan hidup: aspek mikroba, teknik kebersihan dan pelestarian 5.4.1 Aspek mikroba Komunitas mikroba terkait Seperti disebutkan di atas, muatan organik dalam kultur rotifer sangat tinggi. Ketika suhu meningkat, tingkat pertumbuhan bakteri tinggi diperoleh (Skjermo dan Vadstein, 1993). Hal ini menghasilkan rotifera yang membawa beban bakteri yang tinggi (misalnya 2,43 x 109 CFU / g rotifera berat basah untuk rotifera yang diberi campuran I. I. galbana dan ragi roti) (Nicolas et



al.,



1989;



Munro



et



al.,



1999;



Haché



dan



Plante,



2011).



Beberapa bakteri ini dapat bersifat patogen terhadap rotifera (mis. Vibnio alginolyticus; Yu et al., 1990). Ada juga virus, mis. rotifer birnavirus (Comps et al., 1991a, b; Comps dan Menu, 1997), dan jamur (Comps et al., 1993) terdeteksi yang merusak rotifera dan mungkin menjadi penyebab kematian kultur



massa rotifer. Qi et al. (2009a) mengamati korelasi antara perubahan komposisi komunitas mikroba dan perubahan tingkat pertumbuhan rotifer. Kurva Lorenz dan koefisien Gini menunjukkan bahwa kultur rotifer yang berkinerja baik memiliki struktur komunitas mikroba yang lebih merata di B. plicatilis sensu strictu, B. plicatilis ‘Cayman’ dan B. plicatilis ‘Nevada’. Hino (1993) sebelumnya menyarankan bahwa keruntuhan dalam kultur rotifer berkorelasi dengan perubahan dalam komunitas mikroba. Komunitas mikroba terkait yang Qi et al. (2009a) yang terdeteksi berbeda untuk rotifera yang termasuk dalam garis keturunan genetik yang berbeda. Namun, masalah yang lebih besar terletak pada kenyataan bahwa rotifera bisa menjadi vektor patogen ikan / udang (lihat manajemen komunitas mikroba di bawah) (Nicolas et al., 1989; Muroga, 1995; Verdonck et al., 1997; Yan et al., 2007). Di sisi lain, bakteri juga dapat memiliki efek positif terhadap rotifera karena beberapa menghasilkan vitamin B12 (Yu et al., 1989) atau meningkatkan laju pertumbuhan rotifer (Rombaut et al., 1999) (lihat di bawah). Manajemen komunitas mikroba Karena rotifera mampu menyaring bakteri, komunitas mikroba rotifera didefinisikan oleh komunitas mikroba yang ada dalam air kultur. Bakteri yang dipilih dapat ditambahkan ke air kultur untuk menggeser komunitas mikroba mereka ke arah yang menghasilkan kultur yang berkinerja lebih baik (Gatesoupe et al., 1989; Rombaut et al., 1999) atau ke bakteri yang bermanfaat bagi predator ( Gatesoupe, 1991). Mikroalga diketahui membentuk komunitas mikroba di lingkungannya (Natrah et al., 2011) dengan secara selektif meningkatkan dan / atau menahan bakteri tertentu. Ini berarti bahwa seseorang dapat menggeser komunitas mikroba rotifer yang dibiakkan melalui pakan yang diberikan. Qi et al. (2009b) menemukan bahwa spesies bakteri dominan dalam kultur rotifer yang memberi makan N. oculata berbeda dari spesies yang diberi makan oleh tukang roti berbasis ragi. Ketika rotifera dikultur pada campuran pakan di atas, dengan makan secara simultan atau dengan memberi makan kedua pakan setiap batch lainnya, sidik jari mikroba serupa. Bakteri probiotik (probiotik didefinisikan oleh Verschuere et al. (2000) sebagai 'tambahan mikroba hidup yang memiliki efek menguntungkan pada inang dengan memodifikasi komunitas mikroba yang terkait inang atau sekitar,



dengan memastikan peningkatan penggunaan pakan atau meningkatkan nilai gizinya. , dengan meningkatkan respons inang terhadap penyakit, atau dengan meningkatkan kualitas lingkungan sekitarnya) ditambahkan pada awal kultur batch pertama masih diambil setelah empat batch berturut-turut masing-masing tiga hari. Ini adalah kasus ketika rotifera diberi makan baik hanya N. oculata, diet berbasis ragi, campuran kedua pakan yang diberikan secara bersamaan atau diberi makan setiap batch lainnya (Qi et



al.,



2009b).



Komunitas mikroba rotifera juga dapat digeser melalui pengayaan mikroba (Makridis et al., 2000). Pengayaan ini terjadi setelah rotifera dipanen dan sebelum diberikan kepada larva predator. Makridis et al. (2000) memanen dan membilas rotifer dan memaparkannya pada 5 × 107 CFU / mL dari empat spesies probiotik selama 20-60 menit. Probiotik tetap terkait dengan rotifera selama 4-24 jam ketika ditempatkan dalam tangki dengan Tetraselmis sp. meniru kondisi di tangki larva turbot. 5.4.2 Kebersihan: prosedur disinfeksi Karena rotifera adalah pakan pertama dari predator ini, muatan bakteri mereka dapat berdampak besar pada kelangsungan hidup ikan / udang (Benavente dan Gatesoupe, 1988). Ini telah menyebabkan studi tentang pengurangan jumlah bakteri setelah panen rotifer. Munro et al. (1999) menemukan bahwa sinar UV dapat mengurangi beban bakteri lebih dari 90% setelah paparan 2 menit. Suantika et al. (2001) menggunakan ozon dalam sistem resirkulasi untuk mengurangi kepadatan bakteri dalam kultur rotifer. Namun, dalam kedua studi tidak ada efek pada komposisi mikroba. Tanasomwang dan Muroga (1992) menemukan bahwa sodium nifurstyrenate dapat menurunkan beban bakteri sebanyak 10-100 kali, sementara komunitas bakteri beralih ke Vibrio yang lebih sedikit dan lebih banyak Pseudomonas



dan



/



atau



Moraxella.



Takaoka



et



al.



(2011)



mampu



mengurangi



V. anguillarum memuat rotifera yang dibiakkan di atas ragi roti dan Chlorella air tawar pekat selama prosedur pengayaan dengan menggunakan ekstrak herbal. Ekstrak Crataegi fructus dan campuran Massa medica, Crataegi fructus, kapiler Artemisia dan Cndium officinale mengurangi beban bakteri hingga enam kali setelah pengayaan 12 jam dibandingkan dengan kontrol. Untuk menjaga kultur rotifer yang



sehat, membersihkan / mendisinfeksi semua bahan yang digunakan sangat penting. Setelah setiap panen, tangki, tabung aerasi, dan alat pemanen harus didesinfeksi menggunakan larutan natrium hipoklorit, campuran



alkyldimethylbenzylammoniumchloride



dengan



glutaraldehyde



atau



campuran



hidrogenperoksida dengan asam peroksiasetat. Karena kultur massa baru sering dimulai dari bagian dari panen kultur massal sebelumnya, kontaminasi (mis. Ciliates) menumpuk. Dengan sering memulai kultur massa baru dari kultur stok, kontaminasi dapat dijaga tetap rendah. Penting untuk mempertahankan stok kultur di ruang terpisah dari kultur massal untuk menghindari kontaminasi silang. Dalam kasus di mana kontaminasi tetap ada atau kultur stok terkontaminasi, desinfeksi lengkap kultur stok rotifer diperlukan. Cara yang drastis adalah dengan membunuh betina oviger, pisahkan telur amiks yang tersisa dan tetaskan dalam kondisi axenic. Ini dapat dicapai dengan paparan glutaraldehid 50-100 ppm selama satu hingga dua jam pada suhu 28 ° C untuk B. plicatilis sensu strictu (Tinh et al., 2006), atau dengan menggunakan trimetroprimsulfametoxasole



pada



10



mL



/



L



(MartinezDiaz



et



al.



,



2003).



Rotifera dapat menghasilkan telur yang beristirahat melalui reproduksi seksual. Ketika telur yang beristirahat ini diperlakukan dengan 0,5% NaOCl selama 3 menit, Douillet (1998) dapat memperoleh bakteri, rotifera bebas dalam 97% kasus. Rombaut et al. (1999) berhasil menggunakan glutaraldehyde untuk mendisinfeksi telur yang sedang beristirahat. Suga et al. (2011) menemukan bahwa mengekspos telur istirahat ke 25% NaOCl diikuti dengan menumbuhkan neonatus dengan adanya campuran empat antibiotik menyebabkan budaya rotifer axenic. 5.4.3 Teknik pengawetan Seperti disebutkan di atas, rotifera hidup dapat disimpan pada suhu rendah (4 ° C) selama beberapa hari tanpa kehilangan kualitas yang signifikan. Assavaaree et al. (2001) menemukan bahwa B. rotundiformis dan strain rotifer yang lebih kecil lebih rentan terhadap kondisi dingin. Produksi telur yang beristirahat dapat menjadi cara untuk menghindari kultur rotifer terus menerus di luar musim produksi larva. Hagiwara et al. (1997) telah menetapkan metode dengan kultur semi kontinu untuk menghasilkan telur istirahat B. rotundiformis dan B. plicatilis. Mereka menemukan bahwa telur yang beristirahat dapat disimpan selama lebih dari 20 tahun



pada suhu 5 ° C. Namun, tingkat penetasan menurun karena infeksi bakteri pada permukaan telur. Mengeringkan telur yang beristirahat melalui liofilisasi dan pengalengan pada 61 kPa (Kilo Pascal) menghasilkan 35% menetas setelah pengawetan 12 bulan. Saat istirahat telur diperlakukan dengan NaOCl atau sodium nifurstyrenate, masing-masing menetas meningkat menjadi 68% atau 80% (Balompapueng et al., 1997). 5.5 Artemia sebagai pakan hidup: gambaran umum 5.5.1 Morfologi Artemia adalah artropoda primitif dengan tubuh tersegmentasi yang dilampirkan pada embel-embel mirip daun lebar bernama thoracopodes. Panjangnya adalah –8-10 mm untuk pria dewasa dan ∼10-12 mm untuk wanita. Tubuh terbagi menjadi kepala, dada dan perut. Kepala terdiri dari satu prostomial dan lima segmen metamerik yang menyandang median dan mata majemuk dan labrum, antena pertama, antena kedua, mandibula, maksila pertama atau rahang atas, dan maksila kedua atau rahang atas. Toraks dibangun dari 11 segmen, masing-masing dilengkapi dengan sepasang torakopoda, sedangkan perut terdiri dari delapan segmen. Dua segmen perut anterior sering disebut sebagai segmen genital dan di antaranya adalah yang pertama membawa gonopoda, baik kantong induk (uterus) betina atau pasangan penis jantan. Segmen perut 2-7 tidak memiliki pelengkap. Segmen perut terakhir memiliki cercopoda, juga disebut furca atau telson. Seluruh tubuh ditutupi dengan rangka kitin yang tipis dan fleksibel, tempat otot-otot melekat secara internal. Exoskeleton dilepaskan secara berkala dan pada wanita mabung mendahului setiap ovulasi, sedangkan pada pria korelasi antara moulting dan reproduksi belum diamati (lihat Criel dan MacRae, 2002a, untuk detail lebih lanjut tentang morfologi dan struktur Artemia). 5.5.2 Taksonomi Genus Artemia (Crustacea, Branchiopoda, Anostraca) terdiri dari sejumlah spesies yang bereproduksi secara seksual ('spesies biseksual') dan sejumlah populasi yang mereproduksi secara partenogen secara genetik. Ada sedikit perbedaan morfologis yang terlihat secara makroskopis antara berbagai spesies genus. Identifikasi spesies Artemia biseksual telah ditetapkan oleh uji silang, diferensiasi morfologis dan morfometrik, studi sitogenetika dan alozim; saat ini, semakin penting diberikan analisis



nuklir dan mitokondria, termasuk pengurutan (Gajardo et al., 2002). Dengan pengecualian perkawinan silang, semua teknik ini juga berkontribusi dalam mengidentifikasi jenis-jenis partenogenetik yang dideskripsikan sebagai A. parthenogenetica, Barigozzi 1974. Hubungan filogenetik populasi dan / atau spesies dalam genus masih merupakan masalah diskusi dan kebutuhan akan pendekatan multi-sifat untuk mengidentifikasi spesies umumnya diakui sebagai esensial (Baxevanis et al., 2006). Nama A. salina telah menyebabkan kebingungan yang cukup besar di seluruh dunia karena sering penulis telah menyebutkan (dan masih menyebutkan nama) semua udang air asin A. salina, sedangkan nama spesies ini Allan harus dibatasi pada salah satu spesies biseksual, yang secara khusus ditemukan di wilayah Mediterania (Triantaphyllidis et al., 1997). Perbedaan tujuh spesies biseksual, didefinisikan terutama oleh kriteria isolasi reproduksi seperti yang ditemukan dalam tes laboratorium, dan banyak populasi partenogenetik saat ini diakui. Endemik ke Eropa, Afrika dan Asia (dan juga ditemukan di Australia) adalah populasi partenogenetik (dengan berbagai tingkat ploidi). Di benua ini juga ditemukan biseksual berikut (lihat Gajardo et al., 2002 untuk perincian lebih lanjut): • A. salina (Leach, 1819): Wilayah Mediterania • A. urmiana (Günther, 1890): Danau Urmia, Iran dan satu Situs Krimea, Ukraina • A. sinica (Cai, 1989): pedalaman Tiongkok dan Mongolia • A. tibetiana (Abatzopoulos et al., 1998): Tibet • A. sp. (Pilla dan Beardmore, 1994): danau yang tidak terdefinisi di Kazakhstan Endemik ke Amerika adalah: • A. persimilis (Piccinelli dan Prosdocini, 1968): selatan Amerika Selatan • A. franciscana (Kellogg, 1906): Utara, Tengah dan Selatan Amerika, dengan A. franciscana monica menjadi kasus khusus dari populasi yang dideskripsikan sebagai habitat unik secara ekologis (Danau Mono, California, AS).



5.5.3 Ekologi Artemia udang air garam adalah organisme zooplanktonik yang ditemukan secara global di habitat hipersalin seperti danau garam di daratan, wajan garam pantai, dan pabrik garam yang dikelola (lihat Van Stappen, 2002, untuk aspek ekologis dari distribusi Artemia). Saat ini, lebih dari 600 situs telah



dicatat, meskipun daftar tersebut mencerminkan pekerjaan inventaris sistematis untuk area spesifik dan bukan refleksi akurat dari distribusi zoogeografis yang sebenarnya, karena banyak area (misalnya Afrika sub-Sahara) masih belum dieksplorasi (Van Stappen, 2002 ). Tidak ada Artemia yang ditemukan di daerah di mana suhu rendah sepanjang tahun tidak termasuk pengembangannya, tetapi banyak strain ditemukan di daerah benua Amerika Utara dan Selatan dan Asia dengan suhu musim dingin yang sangat dingin, selama suhu musim panas yang cukup tinggi memungkinkan penetasan kista. dan kolonisasi lingkungan selanjutnya. Menjadi sangat osmotolerant, udang air asin bertahan hidup di lingkungan dengan salinitas berkisar antara sekitar 10 dan 340 g / L dengan komposisi ionik dan rezim suhu yang beragam; secara umum, ambang salinitas yang lebih rendah dari kejadiannya ditentukan oleh toleransi salinitas predatornya di daerah tersebut, dan populasi Artemia yang berlimpah secara konsekuen hanya ditemukan pada salinitas yang cukup tinggi untuk menghilangkan (hampir) semua predator atau pesaing makanan. Artemia secara luar biasa disesuaikan dengan lingkungan yang ekstrem seperti itu, karena kapasitas osmoregulasi yang unik dan kapasitasnya untuk mensintesis hemoglobin yang sangat efisien (lihat Clegg dan Trotman, 2002, untuk rincian lebih lanjut tentang aspek fisiologis dan biokimia ekologi Artemia). Artemia mereproduksi oleh dua mode, yang melibatkan produksi nauplius (ovoviviparous) atau kista (ovipar), tergantung pada kondisi ekologi yang berlaku (Criel dan MacRae, 2002b). Ovoviviparity terjadi dalam kondisi lingkungan yang menguntungkan: telur (dibuahi setelah kawin dalam kasus spesies biseksual atau tidak dibuahi dalam kasus betina partenogenetik) menghasilkan larva berenang bebas ('nauplii') yang dilepaskan oleh induknya. Di sisi lain, reproduksi ovipar terjadi di bawah kondisi yang tidak menguntungkan biasanya ditandai oleh faktor-faktor seperti salinitas tinggi, kadar oksigen rendah, tekanan suhu, penipisan makanan, dll. Dalam mode ini, embrio hanya berkembang hingga tahap gastrula dan dikelilingi oleh cangkang tebal (chorion) yang diinduksi oleh sekresi hormonal dari kelenjar cangkang coklat yang terletak di rahim, sehingga membentuk apa yang disebut sebagai kista. Embrio memasuki keadaan henti metabolisme yang digambarkan sebagai diapause dan dilahirkan oleh betina



(Lavens dan Sorgeloos, 1987; Clegg et al., 1996). Baik oviparity dan ovoviviparity ditemukan pada semua strain Artemia, dan individu wanita dapat beralih dari satu mode ke mode lainnya antara dua siklus reproduksi. Di alam, kista dapat diproduksi dalam jumlah besar, dan struktur alveolar chorion memastikan bahwa sejumlah besar mengapung di permukaan air, atau pada akhirnya dapat tertiup ke darat oleh angin dan gelombang. Setelah dehidrasi, sering dalam kombinasi dengan isyarat lingkungan lainnya seperti hibernasi, diapause kista dinonaktifkan, memberikan embrio diam dengan kemampuan untuk melanjutkan perkembangan embrio lebih lanjut ketika terhidrasi dalam kondisi penetasan optimal. Setelah dipanen dan diproses dengan benar, kista bisa disimpan selama beberapa tahun sementara embrio kering tetap dalam keadaan terhenti metabolisme (Lavens dan Sorgeloos, 1987; Clegg et al., 1996). Ketika kista diam direndam dalam air salinitas lebih rendah, kista bikonkaf terhidrasi, menjadi bulat dan embrio yang dikupas melanjutkan metabolisme yang terganggu. Setelah beberapa jam lagi (tergantung pada kondisi sekitar dan galur), membran luar kista pecah dan embrio muncul, dikelilingi oleh membran tetas. Pada titik ini (tahap payung), embrio menggantung di bawah cangkang kosong, pengembangan nauplius selesai dan dalam waktu singkat membran penetasan pecah (menetas) dan instar I nauplius yang berenang bebas lahir. Larva ini dapat digunakan sebagaimana adanya atau, mengikuti prosedur pengayaan khusus untuk meningkatkan sifat nutrisinya, sebagai pengganti yang mudah untuk diet plankton alami dari larva ikan dan udang (Dhont dan Sorgeloos, 2002, dan referensi di sini; Støttrup dan McEvoy, 2003). Di bawah kondisi ekologis yang menguntungkan, Artemia dapat hidup selama beberapa bulan, tumbuh dari nauplius menjadi dewasa hanya dalam delapan hari dan bereproduksi hingga 300 nauplii atau kista setiap empat hari. strain, atau populasi yang berbeda secara genetik dalam spesies yang sama (Van Stappen, 2002). Di antara strain ini, tingkat keragaman genetik yang tinggi serta keragaman unik dalam berbagai karakteristik kuantitatif telah diamati. Beberapa variabilitas ini bersifat fenotipikal, seperti komposisi nutrisi kista, dan perubahan dari batch ke batch. Karakteristik lain seperti diameter kista, karakteristik



diapause, kapasitas reproduksi dan ketahanan terhadap suhu tinggi dianggap spesifik-regangan dan tetap relatif konstan, yaitu mereka telah menjadi genotip sebagai hasil adaptasi jangka panjang dari strain terhadap kondisi lokal (Vanhaecke dan Sorgeloos, 1980, 1989). Pengetahuan tentang karakteristik (baik genotipik dan fenotipik) dari strain kista tertentu dapat sangat meningkatkan efektivitas penggunaannya dalam pembenihan ikan atau udang. 5.6 Diversifikasi sumber daya Artemia 5.6.1 Sejarah eksploitasi Artemia dan dasar pemikiran diversifikasi. Status Artemia sebagai komoditas ekonomi berasal dari tahun 1930-an ketika beberapa peneliti mengadopsinya sebagai pengganti yang nyaman untuk diet plankton alami untuk larva ikan sehingga mewujudkan yang pertama terobosan dalam budaya spesies ikan yang penting secara komersial. Pada 1950-an, kista Artemia sebagian besar masih dipasarkan untuk perdagangan akuarium dan hewan peliharaan; hanya ada dua sumber komersial: garam pantai bekerja di Teluk San Francisco (California, AS) dan Danau Great Salt (GSL) (Utah, AS). Dengan operasi ikan dan udang muncul dari awal 1960-an dan seterusnya, peluang pemasaran baru diciptakan untuk kista Artemia. Namun, pada pertengahan 1970an



permintaan



meningkat,



panen



menurun



dari



GSL



pajak impor yang tinggi di negara-negara berkembang tertentu dan kemungkinan kekurangan kista buatan yang dibuat oleh perusahaan tertentu mengakibatkan kenaikan harga yang parah untuk kista Artemia. Dampak dramatis dari kekurangan kista pada industri akuakultur yang sedang berkembang memperkuat penelitian tentang rasionalisasi penggunaan Artemia dan eksplorasi sumber daya kista baru. Kekurangan kista secara bersamaan memperkuat pencarian untuk Artemia alternatif dalam upaya untuk meninggalkan penggunaannya sebagai makanan hidup dalam nutrisi larva; sebuah proses yang berlanjut hingga hari ini dengan keberhasilan yang lambat namun mantap. Selama sejarah eksploitasi, GSL tetap menjadi ekosistem alami yang tunduk pada pengaruh iklim dan lainnya; ini telah diilustrasikan oleh panen kista yang tidak dapat diprediksi dan berfluktuasi (lihat Dhont dan Sorgeloos, 2002, dan referensi di sini, untuk lebih jelasnya). Sementara pada akhir abad sebelumnya, panen dari GSL secara dramatis rendah,



situasinya telah kembali normal sejak saat itu dengan panen tahunan mencapai lebih dari 90% dari pasar kista dunia. Meskipun demikian, kebutuhan akan sumber daya alternatif dan meningkatnya permintaan dari budidaya telah mengakibatkan eksploitasi berkala atau banyak dari danau-danau garam kecil dan menengah lainnya, terutama di Siberia selatan, Kazakhstan dan Cina dan di wilayah pesisir Teluk Bohai, Cina. , seiring dengan rasionalisasi lebih lanjut dalam penggunaan Artemia (Lavens dan Sorgeloos, 2000; Dhont dan Sorgeloos, 2002). Seiring dengan eksploitasi sumber daya alam, produksi kista intensif dalam pekerjaan garam surya terdiri dari pangsa pasar penting dalam hal kualitas produk yang tinggi dan pentingnya dalam mempertahankan pengembangan budidaya di banyak negara di selatan. Seringkali produksi ini dilakukan secara musiman (mis. Di musim hujan Asia Tenggara) di daerah di mana tidak ada kejadian alami Artemia. Ini melibatkan transplantasi Artemia yang disengaja, tidak hanya untuk produksi kista Artemia atau biomassa itu sendiri tetapi juga karena efek menguntungkan dari kehadiran Artemia pada proses produksi garam. Tergantung pada kondisi klimatologis, inokulasi juga dapat dianggap definitif ketika satu atau beberapa upaya inokulasi akan mengarah pada pembentukan permanen populasi Artemia, seperti di Australia, Cina dan Afrika Timur. Terutama di Vietnam bahwa kegiatan ini telah terbukti sangat berhasil. Sejak inisiatif pertama tahun 1980-an, minat terhadap budaya musiman Artemia di Delta Mekong telah meluas dan pengetahuannya secara bertahap telah ditransfer ke petani garam rakyat melalui koperasi lokal. Wilayah ini saat ini merupakan pemasok penting kista berkualitas tinggi untuk penggunaan domestik dan untuk pasar internasional (Nguyen Thi Ngoc Anh et al., 2009, 2010).



5.6.2 Diversifikasi sumber daya Sebagian besar produk Artemia yang mencapai pasar dunia adalah A. franciscana Kellogg 1906 dari GSL; produk dari Asia tengah dan timur terdiri dari berbagai jenis partenogenetik dan A. sinica Cai 1989. Panen yang dihasilkan dari produksi garam surya (seperti di Vietnam) umumnya milik San Francisco Bay-type A. franciscana, karena jenis ini memiliki telah digunakan untuk bahan inokulasi asli. Jenis produksi ini mungkin merupakan hasil dari produktivitas



alami (yaitu tidak ada atau intervensi manusia minimal untuk meningkatkan produktivitas) atau prosedur manajemen intensif, seperti yang dikerjakan secara rinci untuk pembuatan garam matahari musiman di delta Mekong, Vietnam (Baert et al., 1997 ; Nguyen Thi Ngoc Anh et al., 2009, 2010). Tergantung pada kondisi klimatologis, galur allochthonous dapat terbentuk dengan sendirinya setelah pengenalan yang disengaja atau tidak disengaja oleh manusia. Perlu dicatat bahwa penyebaran bertahap A. franciscana baru-baru ini ke lingkungan baru yang bersaing dengan dan pada akhirnya mengungguli populasi lokal menjadi pola yang semakin umum di berbagai belahan dunia (wilayah Mediterania, India, Sri Lanka, Afrika Timur, Australia , pesisir Cina; lihat misalnya Amat et al., 2005). Ini menambah kompleksitas status spesies produk kista yang berasal dari daerah ini (mis. Teluk Bohai, Cina) (Van Stappen et al., 2007). Semua produk Artemia yang mencapai pasar diproduksi dari strain liar (seperti GSL) atau dari populasi liar yang telah beradaptasi setelah diperkenalkan oleh manusia ke lingkungan baru (seperti Vietnam).



Allan



saltworks, Kappas et al., 2004). Sejauh ini belum ada program pemuliaan atau seleksi Artemia yang lengkap, meskipun penelitian sedang dilakukan pada heritabilitas karakteristik yang menarik secara komersial sedang berlangsung (lihat misalnya Briski et al., 2008). Prosedur dan peraturan pemanenan lokal di GSL didefinisikan secara ketat, ditegakkan oleh otoritas lokal dan diketahui publik. Peraturan pemanenan di danau garam lainnya (mis. Federasi Rusia, Kazakhstan, Cina) umumnya jauh kurang terdefinisi dengan baik (Van Stappen et al., 2009). Meskipun mungkin ada sistem kuota yang dipaksakan oleh pemerintah, luas dan keterpencilan wilayah dan berbagai danau yang dipanen membuat sulit untuk menghilangkan semua pemanenan ilegal. Secara umum teknologi pemanenan di danau-danau ini ditentukan oleh aksesibilitas dan topografi lokasi; jumlah panen dan prediksi panen; lamanya musim panen; karakteristik populasi udang air asin lokal; dan sarana keuangan untuk investasi dalam pemanenan logistik dan infrastruktur. Bergantung pada kondisi setempat, pada karakteristik kualitas / kuantitas panen dan pada struktur bisnis perusahaan pemanen, pemrosesan dapat dilakukan sebagian di lokasi, dan / atau



produk mungkin dikirim untuk transportasi domestik atau luar negeri untuk pemrosesan akhir atau lengkap



di



tempat



lain.



Statistik produksi hanya tersedia untuk GSL dan untuk produksi di Delta Mekong, Vietnam, di mana produksi secara sistematis dipantau oleh otoritas lokal atau organisasi ilmiah (lihat misalnya Wurtsbaugh dan Gliwicz, 2001, untuk fluktuasi dalam produksi GSL). Dengan tidak adanya badan pengawas publik semacam itu di bidang lain, data produksi kurang lengkap dan / atau keandalannya dan / atau tidak dapat diakses secara terbuka. Di GSL, jumlah panen mentah telah berfluktuasi selama dekade terakhir dalam kisaran sekitar 2000-12.000 ton. Panen kista mentah termasuk kista, cangkang kosong, biomassa Artemia, ganggang dan bahan lainnya. Hasil kering, kista olahan dari produk mentah bervariasi setiap tahun, tetapi biasanya 30-35%. Perkiraan pasokan masa depan yang andal tetap sulit diperoleh karena kurangnya informasi tentang ekologi situs baru, produktivitas populasi Artemia lokal, dan studi teknis dan ekonomi terkait aksesibilitas, kuantitas berkelanjutan, karakteristik sumber daya yang relevan dengan larvikultur , dll. (lihat misalnya Marden et al., 2012). Diversifikasi sumber daya tetap menjadi masalah yang paling penting, bersama dengan rasionalisasi lebih lanjut dari penggunaan Artemia. Sebagai hasil bersih dari semua faktor yang bermain di pasar akuakultur, permintaan global untuk kista, saat ini 002500-3000 ton / tahun, diperkirakan akan meningkat lebih lanjut. Cina adalah konsumen utama (dan akan terus demikian) dengan konsumsi tahunan ∼1500 ton, di mana sekitar setengahnya diimpor dari Rusia dan Kazakhstan dan setengah lainnya diproduksi di dalam negeri (terutama dari danau pedalaman; Teluk Bohai telah memiliki produksi yang relatif stabil selama beberapa tahun terakhir sekitar 400 ton produk mentah). Di Delta Mekong telah ada ekspansi awal pada 1990-an, berkat pengembangan empiris dari teknik dan penyebaran pengetahuan kepada sekelompok petani garam yang lebih luas. Selama beberapa tahun terakhir, area budidaya telah lebih atau kurang stabil hingga 200-400 ha, menghasilkan 15-20 ton produk mentah. Konsolidasi lebih lanjut dari teknologi produksi tambak menjadi kegiatan yang sepenuhnya didukung secara ilmiah, dikombinasikan dengan penyebaran pengetahuan yang permanen dan



menyeluruh kepada petani garam artisanal, merupakan prasyarat untuk pengembangan produksi Artemia yang benar-benar berkelanjutan di wilayah ini. Terlepas dari produksi kista, lebih banyak penekanan akan diberikan pada produksi biomassa Artemia (sebagai pengganti untuk aquafeeds yang lebih tradisional), sehingga memberikan lebih banyak fleksibilitas dalam sistem terintegrasi, dan sistem kultur sedang dikembangkan untuk membuat produksi kedua produk tersebut kompatibel (Baert et al. , 2002; Nguyen Thi Ngoc Anh et al., 2009, 2010). Konsolidasi teknologi juga akan mendapat manfaat dari kebijakan pemerintah di Vietnam yang menguntungkan untuk produksi Artemia (seperti yang ada, misalnya, untuk pengembangan akuakultur). Baru-baru ini, analisis ekonometrik pertama produksi Artemia terintegrasi di delta Mekong telah dilakukan, merumuskan rekomendasi untuk meningkatkan efisiensi produksi dari sudut pandang ekonomi (Nguyen Phu Son, 2010). Secara paralel, diharapkan bahwa produksi Artemia juga akan divalorisasi sebagai sarana akuakultur ekstraktif (penghilangan nutrisi berlebih melalui penggembalaannya di fitoplankton, detritus dan bakteri dari limbah dari - tetapi tidak secara eksklusif kegiatan akuakultur). Secara global, diharapkan bahwa model yang dikembangkan dan pengalaman yang diperoleh di Vietnam akan digunakan untuk inisiatif serupa di bidang lain, meskipun dengan adaptasi yang diperlukan, baik sebagai kegiatan yang sama sekali baru (misalnya di Afrika sub-Sahara) atau untuk fokus kembali tentang manajemen ilmiah dan valorisasi produksi Artemia di daerah di mana ia telah diperkenalkan di masa lalu (misalnya daerah Teluk Bohai, Cina).



5.6.3 Diversifikasi produk akhir kista Pada awal tahun 1980-an wawasan baru dalam karakteristik penetasan dan nutrisi penting memunculkan pemisahan kualitas kista yang berbeda (Sorgeloos et al., 1998, 2001; Sorgeloos, 1999). Saat ini kista ditawarkan di pasaran dalam sejumlah merek, sesuai dengan berbagai kriteria kualitas, di antaranya kualitas penetasan, ukuran kista (dan karenanya biomassa naupliar) dan komposisi nutrisi (HUFAs, vitamin) adalah yang paling penting. Kriteria ini, serta aspek praktis terkait dengan manipulasi harian mereka di tempat penetasan (perilaku dekapsulasi, kemudahan



panen nauplii, warna nauplius, kinetika pengayaan, ...) dan aspek mikrobiologis, semuanya berkontribusi pada harga jual setiap merek. Akibatnya, karakteristik yang menguntungkan dari produk kista digunakan sebagai argumen penjualan, bukan asal geografisnya. Dengan eksplorasi dan eksploitasi sumber daya selain GSL, upaya lebih lanjut terus dilakukan untuk memperluas dan mengkonsolidasikan pengetahuan tentang bagaimana strain ini dapat diterapkan dalam budidaya dengan Allan efisiensi maksimal, yaitu strategi deaktivasi diapause optimal, teknologi penyimpanan dan pemrosesan canggih, dll. Tren diversifikasi produk kista di pasaran saat ini, yang menargetkan pada aspek aplikasi spesifik diharapkan akan terus berlanjut. Peningkatan yang terkait dengan masalah organisasi umum seperti pengurangan tenaga kerja, kebutuhan ruang untuk produksi makanan hidup, menghaluskan variasi kualitas makanan hidup yang sesekali, dll. Juga merupakan fokus konstan produsen kista. 5.7 Perkembangan baru dalam penggunaan Artemia 5.7.1 Aspek terkait penetasan Protokol untuk penetasan udang air asin Artemia telah dioptimalkan selama bertahun-tahun dan saat ini diterapkan sebagai rutin standar dalam pembenihan komersial dan lembaga penelitian di seluruh dunia. Dalam bab ini kami tidak akan mengulangi prosedur yang ditetapkan. Untuk deskripsi praktik dasar yang baik dari penetasan, dekapsulasi dan pengayaan Artemia kita merujuk ke Dhont dan Van Stappen (2003). Namun, karena penggunaan kista Artemia di tempat pembenihan membutuhkan banyak tenaga kerja dan masih merupakan sebagian besar dari biaya produksi, manipulasi yang diperlukan untuk menghasilkan makanan hidup dari kista adalah titik R&D utama untuk perusahaan penghasil kista. Fakta bahwa suatu produk atau metode memungkinkan otomatisasi atau rasionalisasi prosedur harian yang terlibat dalam dekapsulasi, penetasan, pemanenan nauplius, pengayaan nauplius, penyimpanan nauplius, dll. umumnya digunakan sebagai argumen penjualan yang penting.



Selain itu, terlepas dari penyebaran luas dalam sektor protokol standar untuk penggunaan Artemia yang optimal, kondisi kerja praktis di tempat pembenihan sering memaksa perusahaan yang memproduksi kista



untuk menyebarkan kembali pengetahuan dan peningkatan kesadaran secara permanen melalui pelatihan dan sesi demonstrasi di antara pelanggan mereka. Tekanan yang konstan untuk mengurangi biaya produksi (misalnya dengan pengurangan tenaga kerja dan / atau dalam ruang yang dibutuhkan untuk produksi makanan hidup) kadang-kadang membawa tempat penetasan ke reorganisasi departemen makanan hidup mereka yang mengarah ke output yang kurang optimal atau biasa-biasa saja, misalnya dengan mempekerjakan murah tetapi tenaga kerja tidak terampil, dengan penyederhanaan prosedur standar yang tidak dibenarkan, dll. Kebutuhan permanen untuk merasionalisasi prosedur aplikasi makanan hidup dan untuk menyebarkan pengetahuan terkait ke sektor ini semakin diperkuat oleh tren menuju diversifikasi. Pertama, asal geografis batch kista komersial mungkin beragam (dan galur baru kadang-kadang - kadang-kadang sementara - muncul di pasar). Kedua, bidang aplikasi diversifikasi dengan meningkatnya jumlah spesies akuakultur; ini menghasilkan tantangan permanen untuk menilai apakah prosedur standar (seperti yang dikerjakan misalnya untuk Great Salt Lake A. franciscana, jenis yang paling umum di pasaran) juga berlaku untuk galur kista yang baru di pasar dan untuk rentang aplikasi



baru



yang



diperlukan



untuk



larvikultur



spesies



baru.



Karena



itu,



karakteristik yang menguntungkan dari produk kista daripada asal geografisnya digunakan sebagai argumen penjualan. Karena ketersediaan setiap galur dapat bervariasi dari panen ke panen dan karena karakteristik masing-masing kelompok sebagian tergantung pada kondisi lingkungan, produsen kista melakukan analisis biologis, kimia, biometrik dan nutrisi secara teratur untuk menentukan karakteristik dari berbagai sumber dan kumpulan kista. , dan untuk mengidentifikasi bidang aplikasi yang tepat. Ketika menetas kista Artemia, persalinan yang cukup dan keterampilan yang cukup diperlukan untuk memisahkan cangkang kista kosong dan kista penuh yang tidak menetas dari instar I nauplii sebanyak mungkin dan untuk berkonsentrasi dan membilas nauplii tanpa merusaknya. Jadi rasionalisasi prosedur ini adalah empat sentral. Teknik dekapsulasi, dengan menggunakan larutan hipoklorit pada pH tinggi, telah berhasil di masa lalu untuk melarutkan chitinous cyst shell (chorion) sebelum menetas, sehingga



menghilangkan kebutuhan untuk pemisahan cyst cyst, dan juga sebagai tindakan disinfeksi profilaksis oleh mengurangi beban bakteri dan jamur yang biasanya ada pada cyst shells (Van Stappen, 1996). Karena kehati-hatian harus diambil untuk menghindari paparan yang berkepanjangan dari embrio Artemia dekapsulasi pada larutan hipoklorit toksik, keahlian yang cukup diperlukan dalam penerapan teknik ini dengan benar, dan modalitas penerapannya perlu diubah ketika menggunakan berbagai jenis Artemia yang mungkin berbeda dalam karakteristik paduan suara mereka. Selain itu, meningkatnya pembatasan yang diberlakukan oleh otoritas pada pembuangan limbah yang mengandung senyawa beracun (seperti hipoklorit) ke lingkungan menciptakan kebutuhan untuk mengembangkan prosedur meminimalkan penggunaan hipoklorit tanpa, bagaimanapun, membahayakan efisiensi perawatan. Kombinasi R&D yang ditujukan untuk mengurangi tenaga kerja dan keramahan lingkungan diilustrasikan oleh pengembangan Sep-Art SEPARATOR® (INVE, Baasrode, Belgia), sebuah perangkat yang memungkinkan pemisahan nauplii dengan mudah setelah menetas, terlepas dari asal atau kualitas tetas, ketika menggunakan SEPArt® Artemia, yang pada dasarnya adalah kista Artemia reguler yang dilengkapi dengan lapisan magnetik pada



kista.



Aspek mikrobiologis dari produksi makanan hidup dan prosedur administrasi adalah titik fokus lain dari perkembangan baru di sektor ini, sejalan dengan meningkatnya perhatian yang diberikan kepada mikrobiologi dari setiap aspek yang mungkin dari larvikultur dalam beberapa tahun terakhir (lihat Bagian 5.7.3). Ini termasuk peningkatan teknis teknis dalam prosedur penanganan (misalnya untuk pembilasan yang optimal dan konsentrasi penetasan pasca nauplii instar I tanpa menyebabkan kerusakan dan kematian naupliar yang dapat meningkatkan proliferasi bakteri), tetapi juga pengembangan produk baru yang mengklaim efek positif dengan menyetir ('pengkondisian') komunitas mikroba yang terlibat dalam produksi makanan hidup (lihat Bagian 5.7.3). Beberapa produk ini mengklaim efek zootechnical bermanfaat tambahan, yang mungkin secara langsung atau tidak langsung terkait dengan komposisi mikrobiologis media penetasan: mis. fasilitasi pemisahan pasca penetasan nauplii, meningkatkan 'vitalitas'



dan 'kualitas' naupliar, pengurangan pembentukan busa selama penetasan dan penyimpanan, dll. Aktif agen dapat dikomersialkan baik sebagai produk terpisah (untuk ditambahkan ke media tetas) atau dalam kombinasi dengan produk kista itu sendiri. Yang terakhir ini juga berlaku untuk batch kista tertentu yang ditawarkan di pasar tanpa diapause rusak dengan benar selama jalur pemrosesan (mis. Untuk strain yang membutuhkan penyimpanan dingin yang sangat lama untuk pemecahan diapause optimal); dalam hal ini, sebelum pengemasan, kista dicampur dengan bahan kimia (mis. dalam bentuk kristal) yang larut dalam media tetas dan diklaim dapat pecah diapause selama proses inkubasi penetasan. Kriteria kuantitatif untuk hasil penetasan, seperti 'persentase penetasan' (jumlah nauplii yang diperoleh dari 100 kista penuh) dan terutama 'efisiensi penetasan' (jumlah nauplii yang diperoleh dari satu gram bahan kista) digunakan secara universal. Bergantung pada kebutuhan bidang aplikasi tertentu, informasi kuantitatif lainnya mungkin relevan, seperti jumlah biomassa naupliar yang diperoleh per satuan berat kista; panjang naupliar saat menetas; dan pertumbuhan naupliar selama periode inkubasi penetasan standar. Juga tingkat penetasan, dinyatakan sebagai selang waktu yang diperlukan untuk mendapatkan penetasan ambang tertentu, mis. 85 atau 90% dari kista yang dapat menetas, atau untuk mendapatkan sejumlah biomassa naupliar, mungkin merupakan kriteria penting dari kinerja produk.



5.7.2 Aspek-aspek yang berhubungan dengan nutrisi Segera setelah itu menjadi bahan pakan hidup yang populer pada masa-masa awal akuakultur, disadari bahwa Artemia kekurangan nutrisi tertentu dan karenanya tidak memenuhi semua persyaratan larva predator (terutama laut). diumpankan ke. Awalnya sebagian besar perhatian diberikan pada kandungan HUFA dari Artemia karena ditemukan bahwa ini merupakan faktor penting dalam keberhasilan pemeliharaan larva ikan dan larva krustasea. Sorgeloos et al. (2001) meninjau sejarah penelitian tentang HUFA makanan. Pada 1980-an, fokusnya adalah pada tingkat asam eikosapentaenoat (20: 5n-3, EPA), sementara kemudian perhatian dialihkan ke asam docosahexaenoic (20: 6n-3, DHA) dan perbandingannya dengan EPA karena tampaknya meningkatkan



kualitas larva (misalnya ketahanan terhadap stres, pigmentasi, dll.). Pada akhir 1990-an, kemudian ditunjukkan bahwa asam arakidonat (20: 4n-6, ARA) dan perbandingannya dengan EPA juga penting. Informasi tentang komposisi biokimia Artemia dapat ditemukan di Lavens dan Sorgeloos (1996). Untuk mengatasi kekurangan ini, berbagai produk pengayaan dan prosedur dikembangkan menggunakan mikroalga, ragi, (tumbuh heterotrofik) bakteri pilihan, produk mikroenkapsulasi, produk emulsi dan konsentrat pengemulsi sendiri atau produk mikropartikulat atau kombinasi daripadanya. Teknik pengayaan memanfaatkan fakta bahwa meta-nauplii Artemia adalah pengumpan filter non-selektif yang mengambil hampir semua partikel, sepanjang mereka memiliki dimensi yang memadai. Gambar 5.2 menunjukkan meta-nauplius Artemia yang diperkaya di mana Anda dapat melihat minyak kecil dengan jelas